UNIVERSIDAD AUTÓNOMA CHAPINGO. DEPARTAMENTO DE SUELOS

DIAGNÓSTICO NUTRIMENTAL Y MEDIDAS CORRECTIVAS DE CLAVEL Y CRISANTEMO EN EL DISTRITO DE DESARROLLO RURAL COATEPEC HARINAS, ESTADO DE MÉXICO

TESIS PROFESIONAL.

Que como requisito parcial para obtener el título de: Ingeniero Agrónomo Especialista en Suelos.

PRESENTA: ROCÍO MIXTEGA OLIN.

Chapingo, México. Septiembre 2007.

Esta tesis titulada: DIAGNÓSTICO NUTRIMENTAL y MEDIDAS CORRECTIVAS EN CLAVEL Y CRISANTEMO EN EL DISTRITO DE DESARROLLO RURAL COATEPEC HARINAS, ESTADO DE MÉXICO, fue realizada por el C. Rocío Mixtega Olin, bajo la dirección del Dr. Benjamín Zamudio González y el Dr. Antonio Vázquez Alarcón, fue revisada y aprobada por los miembros del jurado como requisito parcial para la obtención del título de INGENIERO AGRÓNOMO ESPECIALISTA EN SUELOS.

JURADO.

PRESIDENTE: Dr. Antonio Vázquez Alarcón.

SECRETARIO: Dr. Benjamín Zamudio Gonzalez

VOCAL: Dr. Miguel Angel Vergara Sanchéz

SUPLENTE: Ing. Francisco Rodríguez Neave

SUPLENTE: Dr. Miguel Uribe

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ÍNDICE GENERAL ÍNDICE DE FIGURAS ............................................................................................ ix RESUMEN .............................................................................................................. x ABSTRACT.......................................................................................................... xiii 1. INTRODUCCIÓN ................................................................................................ 1 2.0 REVISIÓN DE LITERATURA. ......................................................................... 5 2.1 Biología, clima, sistemas de producción y nutrición del CLAVEL asociadas a prácticas de riego y fertilización. ...................................................... 5 2.1.1 Clasificación taxonómica .................................................................................. 5 2.1.2 Descripción botánica.......................................................................................... 5 2.1.3 Requerimientos edafo-climáticos ................................................................... 6 2.1.3.1 Suelo. ............................................................................................................... 6 2.1.3.2 Luz. ................................................................................................................... 6 2.1.3.3 Temperatura y Humedad Relativa ............................................................... 6 2.1.3.4 Salinidad. ......................................................................................................... 6 2.1.4 Particularidades del cultivo .............................................................................. 6 2.1.4.1. Multiplicación. ................................................................................................ 6 2.1.4.2. Mezcla para Enraizamiento ......................................................................... 6 2.1.4.3. Plantación. ...................................................................................................... 6 2.1.4.4. Control del tiempo de floración ................................................................... 7 2.1.4.5 Abonado. .......................................................................................................... 7 2.1.4.6 Poda. ................................................................................................................ 7 2.1.4.7 Riego. ............................................................................................................... 7 2.1.4.8 Plagas del clavel. ............................................................................................ 8 2.1.4.9 Enfermedades del clavel. .............................................................................. 8 2.1.4.10 Virus en Clavel.............................................................................................. 9 2.1.5 Cosecha. ................................................................................................................ 9 2.1.5.1 Clasificación y conformación del ramo. ...................................................... 9 2.2 Biología, clima, sistemas de producción y nutrición del crisantemo asociadas a prácticas de riego y fertilización. .................................................. 10 2.2.1. Clasificación taxonómica. .............................................................................. 10 2.2.2. Clasificación de Acuerdo a las Características de la Flor. (Hernández, 1999) ................................................................................................................................ 10 2.2.3 Clasificación de Acuerdo a la Forma de Cultivo. ...................................... 11 2.2.4 Clasificación de acuerdo a su uso comercial. ........................................... 11 2.2.5 Clasificación de acuerdo al fotoperiodo ..................................................... 11 2.2.6 Clasificación de acuerdo a respuesta a Temperatura. ............................ 11 2.2.7. Multiplicación .................................................................................................... 11 2.2.8. Particularidades del cultivo del CRISANTEMO. ....................................... 12 2.2.8.1. Longitud del día e iluminación ................................................................... 12 2.2.8.2 Preparación del suelo. ................................................................................. 12 2.2.9. Cultivo de las plantas productoras de flor ................................................ 12 DEPARTAMENTO DE SUELOS

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2.2.9.1 Podas. ............................................................................................................ 12 2.2.9.2 Estacado. ....................................................................................................... 13 2.2.9.3 Sombreado .................................................................................................... 13 2.2.10 Plantas para Producción. .............................................................................. 13 2.2.10.1 Floración de plantas productoras. ........................................................... 14 2.2.11 Plagas del crisantemo.................................................................................... 14 2.2.12. Virus del Crisantemo. .................................................................................... 15 2.2.13 Enfermedades del Crisantemo. ................................................................... 15 2.2.14. Cosecha. ........................................................................................................... 16 3.0 Diagnóstico nutrimental. .............................................................................. 16 3.1 Diagnóstico de aguas de riego. ........................................................................ 17 3.2 Diagnóstico de Suelos........................................................................................ 18 3.3 Diagnóstico de material vegetal........................................................................ 19 4.0 Función de los nutrimentos y sus concentraciones habituales en agua, suelo y tejidos vegetales. ................................................................................... 19 4.1 Absorción de los nutrimentos. .......................................................................... 23 4.1.1 Interceptación por las raíces .......................................................................... 24 4.1.2 Flujo de masas ................................................................................................. 24 4.1.3 Difusión .............................................................................................................. 25 4.2 Características y funciones de los nutrimentos en el metabolismo vegetal ............................................................................................................................ 26 4.2.1 Carbono, hidrógeno y oxígeno ...................................................................... 26 4.2.2 Nitrógeno. .......................................................................................................... 26 4.2.3 Fósforo ............................................................................................................. 28 4.2.4 Potasio ............................................................................................................... 30 4.2.5 Calcio ................................................................................................................. 32 4.2.6 Magnesio ........................................................................................................... 34 4.2.7 Azufre................................................................................................................. 36 4.2.8 Hierro ................................................................................................................. 37 4.2.9 Manganeso ....................................................................................................... 40 4.2.10 Cobre ............................................................................................................... 41 4.2.11 Zinc .................................................................................................................. 42 4.2.12 Molibdeno ....................................................................................................... 42 4.2.13 Boro ................................................................................................................. 43 4.2.14 Cloro y sodio................................................................................................... 45 5.0 Análisis químico de suelo, agua y tejido vegetal como herramienta de diagnóstico integrado y comparado ...................................................................... 46 6.0 Objetivo General ................................................................................................... 47 6.1 Objetivo particulares ........................................................................................... 47 7.0 Hipótesis y Supuestos. ..................................................................................... 48 7.1 Hipótesis general. ............................................................................................... 48 DEPARTAMENTO DE SUELOS

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7.2 Supuestos............................................................................................................. 48 8.0. Materiales y métodos.......................................................................................... 49 8.1 Ubicación de los sitios de muestreo ............................................................... 49 8.1.1Localización del Municipìo de Villa Guerrero ............................................... 49 8.1.2 Orografía Villa Guerrero ................................................................................. 49 8.1.3 Hidrografía Villa Guerrero............................................................................... 49 8.1.4 Clima de municipio de Villa Guerrero ........................................................... 50 8.2. Localización del municipio de Tenango del Valle. ..................................... 50 8.2.1 Orografía Tenango del Valle .......................................................................... 50 8.2.2. Hidrografía Tenango del Valle. ..................................................................... 50 8.2.3 Clima de Tenango del Valle. .......................................................................... 50 8.3. Localización de municipio de Coatepec Harinas ........................................ 51 8.3.1 Orografía Coatepec Harinas. ......................................................................... 51 8.3.2 Hidrografía Coetepec Harinas. ...................................................................... 51 8.3.3 Clima de Coatepec Harinas. .......................................................................... 51 8.4. Características y uso del suelo del Distrito de Coatepec Harinas. ....... 52 8.5 Selección de los sitios de muestreo ................................................................ 52 8.6 Colección de muestras representativas ......................................................... 52 8.7 Preparación de la muestra ................................................................................. 53 8.8 Análisis de muestras de suelos, aguas y materiales vegetales............... 54 8.9 Análisis estadístico .............................................................................................. 54 8.9.1. Estadísticas descriptivas ............................................................................... 54 8.9.2. Correlaciones .................................................................................................. 55 8.9.3 Prueba de T para dos muestras independientes ........................................ 55 8.9.4. Prueba de hipótesis para intervalos ............................................................ 56 9.0. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ............................................................................ 57 9.1. Diagnóstico del agua ......................................................................................... 57 9.1.1 Valores de pH en el agua ............................................................................... 57 9.1.2 Sales solubles (C.E) del agua. ...................................................................... 58 9.1.3 Concentraciones en el agua: P, K, Ca, Mg y Na. .................................... 58 9.1.4 Concentración en agua de microelementos B, Cu, Fe, Mn, Zn. .............. 59 9.1.5 Concentración de Carbonatos, bicarbonatos, cloruros, nitratos y sulfatos en agua dentro del año 2005. .................................................................................. 60 9.1.6 Síntesis de recomendaciones de tratamiento del agua de riego. ............ 60 9.2. Diagnóstico nutrimental comparando con el sistemas de producción de Clavel (suelo y tejidos foliares).......................................................................... 61 9.2.1 Estadística descriptiva de pH, CE y MO de suelo 2004-2005 cultivado con Clavel. .................................................................................................................. 61 9.2.2 Estadística descriptivas de capacidad de intercambio catiónico, e índices de relaciones K/Mg y Ca/Mg en suelos cultivados con clavel. ........................... 63 9.2.3 Estadística descriptiva de nutrimentos en suelo, raíces y hojas N, P, K, Ca, Mg y B del cultivo de clavel. ............................................................................. 64 9.2.4 Contenidos de Fe, Mn, Cu y Zn tejidos de raíz y hoja de clavel. ............. 72

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9.3 Matriz de Correlaciones entre nutrimentos de suelo, raíz y hoja en el cultivo de Clavel. ......................................................................................................... 75 9.4. Prueba de Hipótesis para rango de suficiencia de los nutrimentos en suelo, raíz y hoja de clavel. ....................................................................................... 76 9.4.1 Pruebas de hipótesis de rango de suficiencia de pH, CE y MO de suelos con cultivo de Clavel. ................................................................................................ 76 9.4.2. Fracciones de las partículas del suelo y cálculo estimado de constantes de humedad del suelo. .............................................................................................. 78 9.4.3 Disponibilidad de NI y P en suelo (oferta) contra las concentraciones de N y P en tejidos foliares de Clavel (demanda). ..................................................... 79 9.4.4 Disponibilidad de Ca, y Mg en suelo (oferta) contra concentración de K, Ca y Mg en tejidos foliares de clavel. ..................................................................... 81 9.4.5 Prueba de hipótesis de rangos de suficiencia de Microelementos: Fe, Mn, Cu y Zn con cultivo de Clavel. ......................................................................... 83 9.5. Síntesis de recomendaciones de enmienda de los sistemas de producción de Clavel en el D.D.R. Coatepec Harinas. Estado de México. .. 85 9.6. Diagnóstico nutrimental comparando de los sistemas de producción de Crisantemo (suelo y tejidos foliares). .............................................................. 86 9.6.1 Valores de estadística descriptiva de pH, C.E. y M.O. de suelo cultivado con Crisantemo. ......................................................................................................... 86 9.6.2 Estadísticas descriptivas de Capacidad de Intercambio Catiónico, e Índices de Relaciones K/Mg y Ca/Mg en suelo cultivado con Crisantemo. ..... 88 9.6.3 Estadísticas descriptivas de los contenidos de Ni, P y K en el “continum” del suelo-raíces y hoja de Crisantemo. .................................................................. 89 9.6.4. Estadística descriptiva de Ca, Mg y B en suelo y tejidos foliares de crisantemo. ................................................................................................................. 94 9.6.5 Estadística descriptiva de microelementos: Fe, Mn, Cu y Zn de tejidos de crisantemo (raíces y hojas) ................................................................................. 97 9.8. Prueba de Hipótesis para rango de suficiencia......................................... 101 9.8.1. Pruebas de hipótesis de rango de suficiencia de pH, CE y MO de suelos con cultivo de Crisantemo. ..................................................................................... 101 9.8.2. Fracciones texturales y cálculo de contrastes de humedad del suelo con relación a principios de uso eficiente del agua de riego cultivado con Crisantemo................................................................................................................ 102 9.8.3 Disponibilidad de Ni y P en suelo (oferta) contra las concentraciones de N y P en tejidos foliares de Crisantemo (demanda). ......................................... 103 9.8.4 Disponibilidad de Ca, y Mg en suelo (oferta) contra concentración de K, Ca y Mg en tejidos foliares de crisantemo. .......................................................... 106 9.8.5 Prueba de hipótesis de microelementos: Fe, Mn, Cu y Zn cultivado con Crisantemo................................................................................................................ 108 9.9 Síntesis de recomendaciones de enmienda de los sistemas de producción de Crisantemo en el D.D.R. Coatepec Harinas. Estado de México. ......................................................................................................................... 109 10.- Conclusiones ...................................................................................................... 110 10.1. Conclusiones del Cultivo de Clavel............................................................. 110 10.2 Conclusiones del cultivo de crisantemo ...................................................... 113 DEPARTAMENTO DE SUELOS

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10.3 Conclusiones generales: ............................................................................... 116 11. Bibliografía ........................................................................................................... 117 Anexo 1……………..…………...……………………………………………………121 Datos Experimentales de Clavel ...................................................................... 122 Anexo 2 .............................................................................................................. 137 Datos Experimentales de Crisantemo ............................................................. 137 Anexo 3 ......................................................................................................................... 149 Fotografias .................................................................................................................... 149 ÍNDICE DE FIGURAS Cuadro 1. Estados de la Republica Mexicana productores de flor (2004) según el Sistema de Información Agrícola de Consulta 2004 y GEM, SEDAGRO. 2004 ...... 2 Cuadro 2. Superficie cultivada con flores en el Estado de México, Revista Claridades 2004. ..................................................................................................... 4 Cuadro 3. Principales plagas, control químico, materia activa del cultivo de Clavel. ................................................................................................................................ 8 Cuadro 4. Principales Enfermedades, control químco y materia activa del Cultivo de Clavel. ................................................................................................................ 8 Cuadro 5. Principales virus y control del Cultivo de Clavel. .................................. 9 Cuadro 6. Principales plagas y control químico del Cultivo de Crisantemo. ....... 14 Cuadro 7. Principales Virus y control del cultivo de Crisantemo. ......................... 15 Cuadro 8. Principales enfermedades y control quimico del cultivo de Crisantemo .............................................................................................................................. 15 Cuadro 9. Concentraciones ordinarias de minerales en la solución y en el complejo de intercambio del suelo agrícolas según Bidwell, 1979. ...................................... 21 Cuadro 10. Contenidos promedio de nutrimentos en agua destinadas para la agricultura.............................................................................................................. 22 Cuadro 11. Contenidos nutrimentales del suelo óptimos en la producción agrícola intensiva ................................................................................................................ 23 Cuadro 12. Contenido promedio de nutrimentos esenciales en materia seca en crisantemo y clavel. ............................................................................................... 23 Cuadro 13. Porcentajes de absorción de los minerales por flujo de masas, interceptación por raíces y difusión. ...................................................................... 25 Cuadro 14. Valores promedios de pH, C.E., RAS y concentraciones de algunos nutrimentos de 20 muestras de agua de riego derivada de escurrimientos del Volcán del Nevado de Toluca en el área del Distrito de Desarrollo Rural de Coatepec de Harinas en el Estado de México. Diciembre 2004 y 2005 ................ 59 DEPARTAMENTO DE SUELOS

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Cuadro 15.Valor promedio de concentración de Carbonato, bicarbonatos, cloruros, nitratos y sulfatos en 23 muestras de agua de riego derivada de escurrimientos del Volcán del Nevado de Toluca en el área del Distrito de Desarrollo Rural de Coatepec de Harinas en el Estado de México. Junio 2005 ................................... 60 Cuadro 16. Estadística descriptiva de seis variables del suelo con cultivo de Clavel. ................................................................................................................... 62 Cuadro 17. Coeficientes de Asimetría y Curtosis de seis parámetros del suelo con clavel. .................................................................................................................... 62 Cuadro 18 Variables estadísticas de contenidos de N, P, K en suelo con Clavel. 65 Cuadro 19. Coeficientes de Asimetría y Curtosis de N, P y K del suelo. ............... 65 Cuadro 20. Variables de estadística descriptiva de N, P y K en hoja y raíz de clavel. .................................................................................................................... 66 Cuadro 21. Coeficientes de Asimetría y Curtosis para seis nutrimentos en raíz y hoja de clavel ........................................................................................................ 66 Cuadro 22. Variables estadística descriptivas de Fe, Mn, Cu, Zn en raíz y hoja de clavel. .................................................................................................................... 73 Cuadro 23. Coeficientes de asimetría y Curtosis de Fe, Mn, Cu, Zn en raíz y hoja de clavel. ............................................................................................................... 73 Cuadro 24. Coeficientes de Correlación más significativas de microelementos de suelo, raíz y hoja. .................................................................................................. 76 Cuadro 25. Prueba de hipótesis de rango de suficiencia de pH, C.E., M.O., CIC, y relaciones de K/Mg, Ca/Mg. .................................................................................. 77 Cuadro 26. Valores promedios fracciones de las partículas de suelos y variables estimadas de humedad en sitios cultivados con Clavel en DDR Coatepec Harinas Estado de México. ................................................................................................. 79 Cuadro 27. Prueba de hipótesis de Rango de suficiencia en N, P y K de suelo-raízhoja en clavel ........................................................................................................ 82 Cuadro 28. Prueba de hipótesis de Ca, Mg, B en suelo-raíz-hoja del cultivo de Clavel. ................................................................................................................... 83 Cuadro 29. Pruebas de hipótesis de microelementos Fe, Mn, Cu y Zn en el cultivo de Clavel. .............................................................................................................. 84 Cuadro 30. Estadística descriptiva de elementos del suelo con cultivo de Crisantemo. ........................................................................................................... 87 Cuadro 31. Coeficientes de Asimetría y Curtosis de parámetros físico-químicos del suelo. ..................................................................................................................... 88 Cuadro 32. Variables estadísticas de N, P, K contenido en suelo cultivados con Crisantemo ............................................................................................................ 89 Cuadro 33. Coeficiente de Asimetría y Curtosis de N, P y K del suelo con Crisantemo. ........................................................................................................... 90 DEPARTAMENTO DE SUELOS

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Cuadro 34. Variables de estadística descriptiva de N, P y K en hoja y raíz de crisantemo. ............................................................................................................ 90 Cuadro 35 Coeficientes de Asimetría y Curtosis para N, P, K en raíz y hoja de crisantemo ............................................................................................................. 90 Cuadro 36. Variables de estadística descriptiva de Fe, Mn, Cu, Zn en raíz y hoja de crisantemo. ...................................................................................................... 98 Cuadro 37. Coeficientes de Asimetría y Curtosis de Fe, Mn, Cu, Zn en raíz y hoja de crisantemo ....................................................................................................... 98 Cuadro 38. Coeficientes de Correlación más significativas de elementos de suelo, raíz y hoja. ........................................................................................................... 100 Cuadro 39 Prueba de hipótesis de rango de suficiencia de pH, C.E., M.O., CIC, y relaciones de K/Mg, Ca/Mg. ................................................................................ 101 Cuadro 40. Valores promedios fracciones texturales de suelos cultivados con Crisantemo en DDR Coatepec Harinas Estado de México. ................................ 103 Cuadro 41. Prueba de hipótesis de Rango de suficiencia en N, P, K de suelo-raízhoja en crisantemo .............................................................................................. 105 Cuadro 42. Prueba de hipótesis de Ca, Mg, B en suelo-raíz-hoja del cultivo de Crisantemo. ......................................................................................................... 107 Cuadro 43. Pruebas de hipótesis de microelementos Fe, Mn, Cu y Zn en el cultivo de Crisantemo. .................................................................................................... 109 Cuadro 44. Valores de pH, C. E., RAS y concentraciones de algunos nutrimentos de 17 muestras de agua de riego derivada de escurrimientos del Volcán del Nevado de Toluca en el área del Distrito de Desarrollo Rural de Coatepec de Harinas en el Estado de México. Diciembre 2004. .............................................. 123 Cuadro 45. Análisis de calidad de 23 muestras de agua colectadas en el DDR. Coatepec Harinas, 2005 ...................................................................................... 124 Cuadro 46. Valores de pH. CE, MO, y textura de suelos cultivados con clavel en DDR Coatepec Harinas, estado de México. Años 2004-2005 ............................. 125 Cuadro 47. Valores de la Capacidad de Intercambio Catiónico (CIC) y relaciones calculadas de K/Mg y Ca/Mg de nueve sitios de producción de Clavel en D. D. R de Coatepec de Harinas en el Estado de México. .............................................. 126 Cuadro 48. Contenidos de N. P, K, Ca, Mg y B en suelos (oferta) cultivados con clavel en DDR Coatepec Harinas. Estado de México. Años 2004-2005 ............. 127 Cuadro 49. Concentraciones de macronutrientes en Tejido de raíces (R) y hojas (H) de clavel cultivados en sitios comerciales del DDR Coatepec Harinas. Años 2004-2005 ........................................................................................................... 129 Cuadro 50. Concentraciones de micronutrientes en tejidos de raíces (R) y hojas (H) de clavel cultivados en sitios comerciales. Años 2004-2005 ......................... 130

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Cuadro 51. Matriz de coeficientes de correlación de Pearson entre los elementos estudiados en el suelo con Clavel ....................................................................... 131 Cuadro 52. Matriz de coeficientes de correlación de Pearson entre los elementos estudiados en la raíz ........................................................................................... 132 Cuadro 53. Matriz de coeficientes de correlación de Pearson entre los elementos estudiados en la hoja .......................................................................................... 133 Cuadro 54. Matriz de coeficientes de correlación de Pearson entre los elementos estudiados del suelo y de la raíz. ........................................................................ 134 Cuadro 55. Matriz de coeficientes de correlación de Pearson entre los elementos estudiados del suelo y de la hoja ........................................................................ 135 Cuadro 56. Matriz de coeficientes de correlación de Pearson entre los elementos estudiados de la raíz y de la hoja ........................................................................ 136 Cuadro 57 Valores de pH. CE, MO, y textura de suelos cultivados con Crisantemo en DDR Coatepec Harinas, estado de México. Años 2004-2005 ........................ 138 Cuadro 58. Valores de la Capacidad de Intercambio Catiónico (CIC) y relaciones calculadas de K/Mg y Ca/Mg de nueve sitios de producción de Clavel en D. D. R de Coatepec de Harinas en el Estado de México ............................................... 139 Cuadro 59. Contenidos de N. P, K, Ca, Mg y B en suelos (oferta) cultivados con Crisantemo en DDR Coatepec Harinas. Estado de México. Años 2004-2005 .... 140 Cuadro 60 Concentraciones de macronutrientes en Tejido de raíces(R) y hojas (H) de Crisantemo cultivados en sitios comerciales del DDR Coatepec Harinas. Años 2004-2005 ........................................................................................................... 141 Cuadro 61 Concentraciones de macronutrientes en Tejido de raíces(R) y hojas (H) de Crisantemo cultivados en sitios comerciales del DDR Coatepec Harinas. Años 2004-2005 ........................................................................................................... 142 Cuadro 62. Matriz de coeficientes de correlación de Pearson entre los elementos estudiados en el suelo ......................................................................................... 143 Cuadro 63. Matriz de coeficientes de correlación de Pearson entre los elementos estudiados en la raíz ........................................................................................... 144 Cuadro 64. Matriz de coeficientes de correlación de Pearson entre los elementos estudiados en la hoja .......................................................................................... 145 Cuadro 65. Matriz de coeficientes de correlación de Pearson entre los elementos estudiados del suelo y de la raíz ......................................................................... 146 Cuadro 66. Matriz de coeficientes de correlación de Pearson entre los elementos estudiados del suelo y de la hoja ........................................................................ 147 Cuadro 67. Matriz de coeficientes de correlación de Pearson entre los elementos estudiados de la raíz y de la hoja ........................................................................ 148

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ÍNDICE DE FIGURAS Figura 1. Esquema de un diagnóstico integrado de un sistema de producción agrícola, Alarcón 2004. ......................................................................................... 17 Figura 2. Localización del Municipio de Villa Guerrero. ........................................ 49 Figura 3. Localización del municipio de Tenango del Valle .................................. 50 Figura 4. Localización del municipio de Coatepec Harinas ................................... 51 Ilustración 1. Manejo del cultivo del clavel en microtunel……………………149 Ilustración 2. Sales y fertilizante en el cultivo de clavel ....................................... 150 Ilustración 3. Cultivo del clavel…………………………………………………….149 Ilustración 4. Roya en clavel................................................................................ 150 Ilustración 5.Ataque de Fusarium en el cultivo de clavel……………………..150 Ilustración 6. Toma de muestras de agua para el cultivo de clavel .................... 151 Ilustración 7. Terrenos para cultivo de clavel…………………………………..150 Ilustración 8. Variedades de clavel ..................................................................... 151 Ilustración 9. Toma de muestras del cultivo de crisantemo en el DDR Coatepec Harinas ................................................................................................................ 152 Ilustración 10. Síntomas de bacteriosis en crisantemo………………………..151 Ilustración 11. Daños por mala aplicación de agroquímicos ............................... 152 Ilustración 12. Cultivo de planta madre en crisantemo………………………..151 Ilustración 13.Aplicación de enraizador antes de la plantación ........................... 153 Ilustración 14 Cultivo de crisantemo bajo microtunel………………………..152 Ilustración 15. Colecta para la muestra de agua ................................................ 153 Ilustración 16. Trabajo en laboratorio……………………………………………..152 Ilustración 17. Secado de suelo a temperatura ambiente ................................... 154 Ilustración 18. Limpieza de raíces…………………………………………………153 Ilustración 19. Lavado de raíces en laboratorio ................................................... 154 Ilustración 20. Oriado de muestras a temperatura ambiente…………………153 Ilustración 21. Secado de muestras a una temperatura de 70° C en la estufa .... 155 Ilustración 22. Hojas y raíces de crisantemo y clavel ya procesado.................... 155

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RESUMEN DIAGNÓSTICO NUTRIMENTAL EN CLAVEL Y CRISANTEMO EN EL DISTRITO DE DESARROLLO RURAL COATEPEC HARINAS, ESTADO DE MÉXICO En el Distrito de Riego de Desarrollo Rural Coatpec Harinas, se colectaron y analizaron muestras de agua, suelo y tejido vegetal procedentes de sitios de producción comercial de Clavel y Crisantemo en los años 2004 y 2005. A los análisis de agua se midieron las variables de pH, C.E, contenido de aniones más cationes y se calculó La Relación de Absorción de Sodio (RAS). Los suelos se prepararon para ser analizados según el Manual del Departamento de Suelos de la UACh y las variables estudiadas a la profundidad de la rizosfera y métodos fueron: pH con relación 2:1 H2O-suelo; CE 1:5 suelo; Materia Orgánica por Walkley-Black; P por Olsen; K, Ca y Mg extractados con NH4OAC1N pH 7; N-NO3 y N-NH4 con KCl 2N (nitrógeno inorgánico Ni = N-NO3 + N-NH4) y boro con extracción de CaCl2 0.01 M con determinación por espectrofotometría con azometine H y textura por Bouyoucos. Las muestras de tejidos vegetales (raíz y hoja recientemente madura) fueron analizadas de acuerdo al Manual del Laboratorio de Nutrición Vegetal del Colegio de Posgraduados; y la digestión fue hecha de 0.5 g de tejido vegetal con mezcla de relación 2:1 de ácido nítrico: perclórico para los elementos de K, Ca, Mg, Mn, Fe, Cu y Zn los cuales se leyeron concentraciones por Absorción Atómica, P por espectrofotómetro y B por método colorímetro. Particularmente el N en tejidos se usó el método de Kjeldahl. Se adoptaron criterios de comparación de los resultados de las muestras de aguasuelo y tejidos vegetales de acuerdo a Alarcón (2004) para la producción de cultivos intensivos de clavel y crisantemo.

Los resultados permiten concluir en materia de la calidad de agua usada en el D.D.R. de Coatepec Harinas para riego de los dos cultivos las concentraciones de elementos de P, Ca, Mg y otros microelementos es despreciable y sin valor económico porque la C.E. fue del orden fue menor de 0.200 dS m-1; esto es francamente baja en sales al proceder de escurrimientos de deshielos y lluvias de corto recorrido del Nevado de Toluca. El índice de la RAS tampoco significó DEPARTAMENTO DE SUELOS

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riesgo, por lo cual sólo se recomienda tratar con acidificantes para reducir el valor promedio del pH de 7.1 y así hacer más eficaz el aprovechamiento de diversos agroquímicos dirigidos al follaje en aspersión.

En lo particular para el cultivo de clavel con relación a los sitios estudiados de los análisis de suelo contra sus contenidos respectivos en tejidos se establece: en suelos el contenido de macroelementos fue alto (N 90% alto, P 88% alto, K, 76% alto de los sitios), contra el bajo contenido en tejido vegetal (N el 80% bajo, P 60% bajo, K 58% bajo). En cuanto a macroelementos secundarios fueron en suelo para Ca 48% bajo y Mg 84% bajo contra el contenido de tejido foliar de Ca 72% normal y Mg 76% bajo. De los microelementos el B se midió en un 68% de sitios con oferta alta contra el 100% de su contenido normal en hojas. Se encontró en hojas la frecuencia de sitios con Fe 72% (normal), Mn 100% (alto), Cu 56% (normal) y Zn 36% (alto).

Del diagnóstico nutrimental de crisantemo al considerar el suelo y los tejidos vegetales se midieron altos contenidos de macroelementos en suelo (N 100% alto, P 88% alto, K 80% alto, Ca 60% alto, pero en Mg 84% bajo) contra el contenido en tejido foliar (N 40% bajo, P 80% normal, K 56% bajo, Ca 92% normal, Mg 52% bajo). En microelementos, se encontró en un 32% de sitios de los suelos estudiados con B calificado de bajo contra un 68% de normal en tejido foliar. En hojas para Fe se midió 60% normal, Mn 90% alto, Cu 64% normal y Zn 52% bajo.

Fueron

notables

los

desbalances

nutrimentales

tanto

en

micro

como

macroelementos, lo que implica tomar medidas de enmienda en ambos cultivos. Aumentar en los suelos el valor del pH por ser muy ácidos (64% en clavel y 60% en crisantemo) con roca dolomita, de modo tal se añada Ca y Mg que son deficitarios en el suelo. Evitar

prácticas de excesiva de fertilización del suelo

porque la CE se interpretó con acumulación excesiva de sal por este factor en un 36% de sitios con clavel y en un 16% de suelos con crisantemo. Se necesita aumentar el contenido de la materia orgánica en los suelos mediante la aplicación DEPARTAMENTO DE SUELOS

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de abonos verdes, orgánicos, compostas, sustancias húmicas y/o fúlvicas porque así lo demandan los cultivos intensivos para aportar suministro de nutrimentos, estabilizar sus propiedades físicas y dinamizar las reacciones microbiológicas. En cuanto a N, P, K se debe fraccionar su oferta durante el ciclo de acuerdo a la demanda de ambos cultivos de flor de corte. Se recomienda profundizar en el estudio de la eficacia de la fertilización de K asociado a la enmienda con roca dolomita para neutralizar exceso de Fe y Mn en suelo; y dirigir aspersiones foliares con B, Cu y Zn sólo con base a diagnóstico de análisis foliar para cada condición de suelo, cultivo y manejo del floricultor.

Palabras claves: diagnóstico, nutrición vegetal, clavel, crisantemo

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ABSTRACT NUTRIMENTAL DIAGNOSIS IN CARNATION AND CHRYSANTHEMUM IN THE DISTRICT OF RURAL DEVELOPMENT COATEPEC HARINAS, STATE OF MÉXICO In the Rural District of Development Coatpec Harinas, they were collected and they analyzed samples of water, soil and vegetable tisuees coming from places of commercial production of Carnation and Chrysanthemum in the years 2004 and 2005. The analyses of water were: pH, salts water solubles, C.E. Content of anions and cationes. The Relationship of Absorption of Sodium was calculated (RAS). The soils got ready to be analyzed according to the Manual of the Department of Soils of the UACh and the variables studied to the depth of the rizosfera and methods were: pH with relationship 2:1 H2O-soil, CE. 1:5 soils, Organic Matter for WalkleyBlack, P for Olsen, K, Ca and Mg summarized with NH4OAC1N pH 7, N-NO3 and N-NH4 with KCl 2N (inorganic nitrogen Neither = N-NO3 + N-NH4) and boron with extraction of CaCl2 0.01M with determination for Spectophotometry with azometine H and texture for Bouyoucos. The samples of vegetables tisuess (root and recently mature leaf) they were analyzed according to the Manual of the Laboratory of Vegetable Nutrition of the Posgraduados School; and the digestion was made of 0.5 g of vegetable insuess with mixture of relationship 2:1 of nitric acid: perclórico acid for the elements of K, Ca, Mg, Mn, Fe, Cu and Zn which concentrations were read by Atomic Absorption, P for espectrofotómetro and B for method colorimeter. Particularly the N in vegetables insuess the method of Kjeldahl was used. Approaches of comparison of the results of the water-soils samples and vegetable insuess were adopted according to Alarcón (2004) for the production of intensive cultivations of carnation and chrysanthemum.

The results allow to conclude as regards the quality of water used in the D.D.R. of Coatepec Harinas for watering of the two cultivations the concentrations of elements of P, Ca, Mg and other microeliments are traces and worthless economic because the C.E was of the order it was smaller than 0.200 dS m -1; this is frankly low in salts when coming from glides of thaw and rains of short journey of the DEPARTAMENTO DE SUELOS

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Snowy one of Toluca and index of the LEVEL neither meant risk reason. It is only recommended to try with acidificantes to reduce the value average of the pH of 7.1 and this way to make more effective the use of diverse chemical directed to the spread foliage.

In the particular thing for the carnation cultivation with relationship to the studied places of the soils analyses against their respective contents in vegetable leaves down: in soils the macroelements content was high (N 90 high%, P 88 high%, K, 76 high% of the places), against the contained first soils in vegetable insuess (N 80% lowers, P 60% lowers, K 58% lowers). As for secondary macroelements they were in soils for Ca 48%. Lower and Mg 84% lowers against the fabric content to foliate of Ca 72 normal% and Mg 76% first soils. Of the microelementos the B was measured in 68% of places with high offer against 100% of its normal content in leaves. It was in leaves the frequency of places with Fe 72% (normal), Mn 100% (high), Cu 56% (normal) and Zn 36% (high).

Of the diagnosis chrysanthemum nutrimental when considering the soils and the vegetable insuess were measured high macroelements contents in soils (N 100 high%, P 88 high%, K 80 high%, Ca 60 high%, but in Mg 84% I lower) against the content in fabric to foliate (N 40% lowers, P 80 normal%, K 56% lowers, Ca 92 normal%, Mg 52% lowers). In microelements, it was in 32% of places of the soils studied with qualified B of first soils against 68% of normal in fabric to foliate. In leaves for Fe was measured 60 normal%, Mn 90 high%, Cu 64 normal% and Zn 52% low.

They were remarkable the desbalances nutrimentales so much in micro as macroelements, which implies to take amendment measures in both cultivations. To increase in the soils the value of the pH to be very acid (64% in carnation and 60% in chrysanthemum) with rock dolomita, in a such way it is added Ca and Mg that are deficit in the soils. To avoid practical of excessive of fertilization of the soils because the CE was interpreted with excessive accumulation of salt by this factor DEPARTAMENTO DE SUELOS

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in 36% of places with carnation and in 16% of soils with chrysanthemum. It is needed the content of the organic matter it increases in the soils by means of the application of green, organic matures, compostas, humic substances and/or fúlvicas because the demand

of the intensive cultivations it requied to supply

nutriments, to stabilize their physical properties and to energize the reactions. As for N, P, K should be fractioned its offer during the cycle according to the demand of both cultivations of court flower. It is recommended to deepen in the study of the effectiveness of K fertilization associated to the amendment with dolomitic rock to neutralize excess of Fe and Mn in soils; and to only direct foliars aspersions with B, Cu and Zn with base to foliate analysis diagnosis for each soils condition, cultivation and the florist's handling.

Key words: diagnosis, Vegetable nutrition, carnation, chrysanthemum

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1. INTRODUCCIÓN La producción comercial de flor ornamental en el Estado de México se inició a mediados de siglo con la introducción de cultivos de gladíolo y clavel por parte de familias japonesas que llegaron después de la segunda guerra mundial al municipio de Villa Guerrero. Esta actividad se mantuvo incipiente hasta principios de la década de los setentas, periodo a partir del cual se realiza una expansión acelerada de la floricultura, gracias a las condiciones benignas agro climáticas de la zona, a la formación empírica de técnicos en ornamentales; y finalmente a la rentabilidad generada por esta actividad frente a otros cultivos tradicionales (Villada, 1989).

México ocupa el tercer lugar mundial por superficie destinada al cultivo de ornamentales de flor y follaje de corte. A esta actividad se dedican en el país un poco más 11,500 ha y aproximadamente un 50% se ubica en el Estado de México (5,500 ha), destacándose el municipio de Villa Guerrero en el Distrito de Desarrollo Rural de Coatepec Harinas. Entre las flores de corte ahí producidas, tanto en el mercado nacional como para exportación se destaca el rosal, crisantemo y clavel (Vergara-Sánchez, 2005; Sistema de Información Agrícola de Consulta 2004; GEM-SEDAGRO Unidad Sectorial de Información, 2004).

Las áreas cultivadas con la flor de corte por regiones en el Estado de México se concentran en las zonas templadas y cálidas sub-húmedas, correspondiéndoles a la región del D.D.R. de Coatepec Harinas un 94% de la superficie florícola estatal. A su vez, de la región de Coatepec Harinas sobre salen las magnitudes cultivadas en el municipio de Villa Guerrero (55%), siguiéndole en importancia los municipios de Tenancingo (21%) y Coatepec Harinas (15%) del total (Villada, 1989; Revista Claridades Agropecuarias 2006).

El clavel, como flor de corte se considera importante a nivel mundial, dado que el volumen de tallos que se manejan en el mercado internacional en países como Holanda, Colombia, Israel y México. (Retamoza, 1989). Además, debido a su fácil y rápida multiplicación, el clavel es objeto de un importante comercio internacional de esquejes. El clavel es el tipo de flor más extendido y es necesario un cambio hacia otros híbridos más atractivos, mejorando aspectos fitosanitarios como: resistencia a virus, hongos, etc., incremento del número de variedades para flor cortada y para el cultivo en maceta y jardinería DEPARTAMENTO DE SUELOS

Por otra parte, el

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crisantemo es una de las especies ornamentales más cultivadas de todo el mundo (http://infoagro.com/flores/flores/clavel.htm).

Cuadro 1. Estados de la Republica Mexicana productores de flor (2004) según el Sistema de Información Agrícola de Consulta 2004 y GEM, SEDAGRO. 2004 Estado

Superficie sembrada (ha)

Valor de la Producción (pesos)

México

5,392

3,046,308,273

Puebla

3,628

297,832,823

Morelos

1,228

168,863,065

San Luis Potosí

810

9,344,050

Guerrero

513

83,271,875

Michoacán

476

72,565,251

Jalisco Baja California Sinaloa Veracruz Oaxaca Distrito Federal Querétaro Durango Nayarit Hidalgo Sonora Tlaxcala Yucatán Guanajuato Chihuahua Baja California sur Coahuila

476 465 342 277 200 176 80 42 23 22 21 14 8 6 3 2 2

28,935,949 99,556,640 37,958,000 11,417,590 6,549,650 219,574,742 16,120,792 2,000,000 3,350,000 8,953,097 1,706,200 477,600 48,651 80,700 440,000 99,990 88,500

Principales Cultivos Crisantemo, Gladiolo, Clavel, rosa, Nube, Girasol, Aster, Ave de Paraíso, Nardo, alheli, Dólar, Lilium, Statice, Terciopelo, Gerbera, Zempoalxochitl, Agapando, Solidago, Alstroemeria, Inmortal, Noche Buena, Geranio, Begonia, Lizana Ornamental, Petunia, Alpiste Ornamental, Cineraria, Rosa (planta), Calancoe, Cyclamen, Polar. Gladiolo, Zempoalxochitl, Nube, Plantas de Ornato, Alheli, Statice, Crisantemo, Rosa, Rosa (gruesa) Noche Buena. Gladiolo, Rosa (gruesa), Nardo (gruesa), Noche Buena, Crisantemo, pasto (tapete), Polar, Zempoalxochitl. Palma de Ornato, Camedor, Flores, Zempoalxochitl. Gladiolo, Nardo, Zempoalxochitl, Margarita, Pasto (tapete), Terciopelo, Nube, Rosa, Flor perrito. Gladiolo, Ave de Paraíso, Zempoaxochitl, Nube, rosa, Mano de León, Noche Buena, Inmortal, Gypsophilia. Pasto (tapete), Ave de paraíso. Flor Cera, Palma de Ornato. Zempoalxochitl. Gladiolo, Palma de Ornato, Azucena, Nardo, Agapando Zempoalxochitl, Gladiolo. Nochebuena, Rosa, Geranio, Alheli, Clavel. Rosa Mano de León, Zempoalxochitl, Margarita. Pasto (tapete). Zempoalxochitl, Rosa. Margarita. Zempoalxochitl, Rosa. Crisantemo, Margarita, Rosa. Zempoalxochitl. Crisantemo. Plantas de Ornato. Flores varias.

Destacan en este cultivo los Países Bajos, Gran Bretaña y Francia, Colombia, Estados Unidos y Canadá donde desde hace mucho tiempo es un cultivo industrializado. Después de la rosa, el crisantemo sigue siendo la flor cortada más vendida en las subastas holandesas de flores.

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De las 5, 500 ha de ornamentales en el Estado de México, la mayoría son de flor de corte tanto a cielo abierto como protegidas por cubiertas de plástico como túneles e invernaderos Cuadro 2. Hace dos décadas se tenía poca diversidad en el uso de fuentes de fertilizantes, prevalecía la aplicación extensiva de fertilizantes, existía poca conciencia de la agricultura sustentable, con amplio desconocimiento de nutrición en flores, poca diversidad de especies y variedades de flor de corte, el mercado tenía pocos requerimientos de calidad de las flores, no existía un desarrollo en sistemas de riego y no se utilizaba el sistema de fertirriego (Cabezas, 2002, Zamudio 2005).

Con relación a la facilidad y competitividad en el acceso a los mercados depende; en gran medida de la calidad de la flor ofrecida, ésta directamente entre otros factores se reconoce fundamental incide directamente la práctica de la nutrición mineral. La fertilización en el Distrito de Coatepec Harinas es hecha en forma empírica sin diagnóstico previo para considerar el balance entre el suministro de nutrimentos del suelo y las necesidades del cultivo. Lo anterior conduce a aplicaciones no balanceadas de fertilizantes, provocando deficiencias o excesos que disminuyen la calidad de la flor (Vergara-Sánchez, 2005).

Por tal motivo, el trabajo de investigación plantea como objetivo general diagnosticar el estado nutrimental con relación al manejo de fertirriego de cultivos ornamentales de clavel y crisantemo del Distrito de Desarrollo Rural de Coatepec Harinas en el Estado de México, mediante procedimientos de análisis e interpretación agronómica del agua de riego, suelos y tejidos vegetales con técnicas normalizadas en laboratorio a fin de establecer las correlaciones nutrimentales del “continum” de la planta (agua-suelo-raíz-hoja) y entre sitios de productores de esta dos especies de flor de corte (Zamudio, 2005).

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Cuadro 2. Superficie cultivada con flores en el Estado de México, Revista Claridades 2004. 1994 Agapando (gruesa)

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Superficie cultivada con flores del Estado de México (ha) 1995 1996 1997 1998 1999 2000 15

15

30

30

35

28

2001

2002

2003

2004

28

34

52

38

Alcatraz (gruesa) Alelí

10 25

Alheli (manojo)

40

35

64

72

64

94

Alstroemeria (gruesa)

91

117

125

10

21

22

85

90

76

98

Aster (manojo) Ave del Paraíso Ave del Paraíso (gruesa)

100

16 22

24

31

47

46

29

53

Azucena (gruesa)

66 45

Begonia (planta)

1

Cineraria (planta) Clavel

70

2

3

3

5

5

6

6

6

1

3

1

4

4

4

4

4

873

Clavel (gruesa) Crisantemo (gruesa)

873

888

429

427

732

724

724

720

720

737

35

84

101

854

896

1,036

1,877

2,467

2,221

2,347

2,298

1

3

2

4

4

4

4

4

65

65

65

35

47

41

45

58 60

60

4

5

Cyclamen (planta) Dólar (gruesa) Dólar (manojo)

6

60

Flores (gruesa)

137

3

2

4

Flores (planta) Geranio

1

1

4

5

11

27

29

Geranio (planta Gerbera (gruesa)

2

3

3

16

22 5

35

433

621

706

211

434

888

Girasol Flor (gruesa) Gladiolo (gruesa) Gypsophilia (gruesa)

5

6

7

9

31

46

46

46

80

93

108

144

754

1,065

798

771

33

93

56

80

Inmortal (manojo)

8

20

Lilium (gruesa) Margarita (manojo)

3

Margaritón (gruesa)

79

Nardo (gruesa)

20

12 197

64 186

18

10

25

Noche Buena (planta) Nube (manojo)

62

Paloma (gruesa)

22

47

92

Petunia (planta)

65

35

65

65

3

4

4

11

53

84

112

190

382

238

95

157

2

3

3

5

5

5

5

5

3

1

413

427

Ptas. de Ornato (planta)

2

Polar (gruesa) Pon-pon (gruesa)

2,243

1,698

1,268

Rosa (gruesa)

63

118

122

247

260

250

264

335

Rosa (planta)

4

4

3

3

4

8

8

8

393

Solidago (manojo) Statice (manojo)

4

13

20

9

Terciopelo Terciopelo (manojo) Zempoalxochitl

45

4

4

4

20

34

34 55

40

11

34

12

58

20

40

27

47

53

48

6

15 10

15

2

25

Zempoalxochitl (manojo) Zempoalxochitl (ramos) Total

803

2

20 153

61

40

10

41

27

53

46

3,690

2,084

2,536

3,416

4,355

5,696

5,185

5,389

15 3,984

3,877

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2.0 REVISIÓN DE LITERATURA. 2.1 Biología, clima, sistemas de producción y nutrición del CLAVEL asociadas a prácticas de riego y fertilización. 2.1.1 Clasificación taxonómica El clavel (Dianthus caryophyllus L.) pertenece a la familia Cariophyllaceae y al género Dianthus. Es una planta perenne de base leñosa con tallos de hasta 80 cm de altura y de día largo. La siguiente clasificación es una de las más completas que se ha dado para el clavel por Cronquist en 1987.

División Magnoliophyta Clase Magnoliopside Subclase Caryophyllidae Orden Caryophyllales Familia Caryophyllaceae Genero Dianthus Especie Caryophyllus 2.1.2 Descripción botánica. Tallo. El tallo del clavel puede llegar a formar de 18 a 22 nudos, cada uno presenta un brote (Escamilla, 2002). Raíz. Es una raíz fibrosa con numerosas raicillas primarias, secundarias y terciarias (Vilarnau y Estanislao, l974). Hojas: lineares, planas, blandas, acuminadas, glaucas, con la base envainadora, disposición opuesta, estipulas reducidas o ausentes (Bell, 1968). Flores: en grupos de 1 a 5, muy olorosas. Epicáliz: con 4 a 6 brácteas anchas, abruptamente acuminadas, mucho más cortas que el cáliz. Cáliz: de 2.5 a 3 cm de longitud, con 4 a 5 sépalos unidos en la base, con dientes triangulares. Pétalos: dentados de forma irregular, no barbados, de 1 a 1.5 cm de longitud (Larson, 1988). Entre 40 y 60 pétalos; androceo de 13 a 17 estambres; gineceo con ovario súpero y tricarpelar, estilo corto y estigma filamentoso y lobulado (Escamilla, 2002). Fruto. Es una cápsula dehiscente apicalmente por válvulas, con placentación central (Romero, 1997). Semilla. La semilla es un óvulo ya maduro de la flor, en la mayor parte de las semillas los integumento del óvulo llegan a ser las duras cubiertas de la semilla madura (Vilarnau y Estanislao, l974). DEPARTAMENTO DE SUELOS

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2.1.3 Requerimientos edafo-climáticos 2.1.3.1 Suelo. El suelo tiene que ser de textura media, bien drenada y aireada para evitar enfermedades criptogámicas o asfixias radiculares. Son preferibles los valores de pH entre 6.5 y 7.5 unidades (Retamoza, 1989, http://infoagro.com/flores/flores/clavel.htm).

2.1.3.2 Luz. Las plantas cultivadas en foto período de 8 horas tienen tallos más largos, flores ligeramente más grandes y producen más brotes laterales (Larson, 1988).

2.1.3.3 Temperatura y Humedad Relativa. Las temperaturas óptimas nocturnas son entre 8 a 12 °C y diurnas de 15 a 25 °C según sea invierno ó verano (Larson, 1988). La temperatura óptima es de 15 a 20 °C. La humedad relativa ideal es del 60 al 70 % en el invernadero. 2.1.3.4 Salinidad. El óptimo de producción se consigue con una salinidad menor de 2 dS m1.

(Escamilla, 2002, http://infoagro.com/flores/flores/clavel.htm).

2.1.4 Particularidades del cultivo 2.1.4.1. Multiplicación. Por micro propagación in vitro y esquejes de brotes con hojas. Se toman esquejes procedentes de plantas madre de 10 cm de longitud y se colocan en invernaderos de multiplicación y sobre un sustrato; con una temperatura alrededor de 20 ºC. El enraizado se tiene en tres semanas (Hartman y Kester, 1984, Larson, 1988, Alarcón 2004, Escamilla, 2002).

2.1.4.2. Mezcla para Enraizamiento. Puede ser 100% material inorgánico o 50% material orgánico. Los esquejes deben ser pre-tratados y manejados en manojos de 25-50 esquejes, con reguladores (enraizador) como: Ácido Indol Acetico, Ácido Indol Butirico, Ácido Naftalen Acetico,

esto

para

producir

raíces

de

mayor

calidad.

(http://infoagro.com/flores/flores/clavel.htm). 2.1.4.3. Plantación. Se plantan en “camas” de 1 m de ancho; de 30 a 35 cm entre plantas (tresbolillo) y con pasillos de 40-50 cm. Entre los cuadros de una malla metálica de 12.5 x 12.5 cm (Larson, 1988), apoyadas en bastidores hechos con hierro de 8 mm, que se DEPARTAMENTO DE SUELOS

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disponen cada tres metros. Las dos primeras tienen cuadrados de 12.5 cm de lado, la tercera de 15 cm y la cuarta de 20 cm. (Alarcón, 2004).

2.1.4.4. Control del tiempo de floración Larson (1988), menciona que el control se comienza con los calendarios de plantación y la época de método de eliminación del ápice. Hace mención que un brote de clavel cambia de una condición vegetativa a una productiva cuando tiene unos 6 pares de hojas.

2.1.4.5 Abonado. -De fondo: después de la preparación del terreno del cultivo y previo a la plantación a 50 cm de profundidad. -De mantenimiento: se puede practicar mediante fertirrigación; aporte de una solución para 1,000 L de agua aplicadas una vez al mes en invierno y cuatro veces al mes en el periodo de fuerte producción (Alarcón, 2004). La aplicación del abonado por medio de la irrigación. Algunos micronutrientes pueden ser requeridos dependiendo del contenido del suelo y el fertirriego (Alarcón, 2004, Larson. 1980).

2.1.4.6 Poda. Esta práctica es realizada después de 4 a 6 semanas y los brazos laterales son de 5 cm de longitud, usualmente en el sexto nudo sobre el botón de la planta. (Larson, 1988, González 1980). Una vez terminada la cosecha de flor se reduce la planta a unos 15 cm de altura (Alarcón, 2004). 2.1.4.6.1 Desbrote. Esta práctica se realiza, eliminando los brotes axilares, que se encuentran por abajo del botón apical. (http://infoagro.com/flores/flores/clavel.htm). 2.1.4.6. 2 Desyeme y Desbotonado. Los cultivares deben ser desyemados retirando los tallos laterales inferiores colocados en los seis nudos por abajo del botón floral terminal. El mejor tiempo para el desyeme es cuando el botón terminal tiene 15 mm de diámetro. Los botones se deberán tomar con las puntas de los dedos y retirarlos con un movimiento circular hacia abajo entre los 30 a 50 días del desbrote (Larson, 1988).

2.1.4.7 Riego. Pueden utilizarse cualquier sistema de riego, automatizado o manual (Larson, 1980). De los riegos, el más importante es el primero realizado inmediatamente después de la plantación. Los otros riegos son durante el cultivo, llamados de auxilio, estos dependiendo DEPARTAMENTO DE SUELOS

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del suelo son semipesados (cuando hay problemas de sales) y ligeros (cuando no hay), durante 20-30 minutos por cama con manguera o cintilla (Escamilla, 2002).

2.1.4.8 Plagas del clavel. Se presenta algunas de las más importantes y contro químico. Cuadro 3. Principales plagas, control químico, materia activa del cultivo de Clavel. Plaga Tortrix europeo (Cacoecimorpha pronubana) y tortrix sudafricana (Epichoristodes acerbella)

Pulgones (Myzus persicae) Trips (Frankliniella occidentalis). Minadores (Psedonapomyza dianthicola). Araña roja (Frankiniella occidentales).

Control Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico, trampas plás Químico

Materia activa Carbaril 48% Carbaril 50% Carbaril 85% Dimetoato 3% Esfenvalerato 2.5% Esfenvalerato 5% Fenpropatrin 10% Metil Azinfos 3% Tralometrina 3.6% Fenpropatrin 10%

Dosis 0.25-0.30% 0.20-0.30% 0.10-0.20% 20-30 kg/ha 1-1.20 L/ha 0.50-0.60 L/ha 1.25-1.50 L/ha 20-30 kg/ha 0.03-0.08% 1.25-1.50 L/ha.

Presentación del producto Suspensión concentrada Polvo mojable Polvo mojable Polvo para espolvoreo Concentrado emulsionable Emulsión de aceite en agua Concentrado emulsionable Polvo para espolvoreo Concentrado emulsión Concentrado emulsionable

Isofenfos 50%,

0.15 a 0.20%.

Concentrado emulsionable

Acefato 75%

0.05-0.15%

Polvo soluble

Químico abamectina, 50mL/100L Concentrado emulsionable Químico amitraz, 190 a 250 g/100L Concentrado emulsionable Químico dicofol, 250-300 g/100L Polvo seco Químico azufre 12-16 g/100L Polvo seco Metcalf, 1984, Razo 1999, http://infoagro.com/flores/flores/clavel.htm, Dic. Esp. Agroquímicas, 2004

2.1.4.9 Enfermedades del clavel. Dentro de las enfermedades que atacan al clavel, conviene distinguirlas dependiendo de los órganos que atacan: hojas, tallos, y flores (Álvarez, 2005). Cuadro 4. Principales Enfermedades, control químco y materia activa del Clavel Enfermedad Fusariosis (Fusarium oxysporum fsp. dianthi) Roya (Uromyces caryophillinus) Mancha foliar (Pseudomonas andropogonis Smith) Rhizoctonia solani Alternaria dianthi

Control Químico Químico

Materia Activa Dodina 50%, Dodina 65%

Dosis 0.10-0.13% 0.08 a 0.10%.

Presentación Suspensión concentrada Polvo mojable

Químico Químico

Difenoconazol 25% Zineb 50%

300-500 g/ha 0.40%

Concentrado emulsionable Suspensión concentrada

Químico Químico

Terramicinas agrícolas Oxitetraciclina

400 g/200L 1.5 kg/ha

Antibiótico agrícola Polvo soluble

Químico Químico Químico Químico Químico

Moncerén Rovral Mancozeb Captan Hortal

100 g/100 hl. 100 g/100 hl. 250 g/hL 120 g/hL 120 cm3/hL

Concentrado emulsionable Concentrado emulsionable Polvo humectante Suspensión acuosa Concentrado

Metcalf, 1984, Razo, 1999, http://infoagro.com/flores/flores/clavel.htm, Dicc. Esp. Agroquímicas 2004 DEPARTAMENTO DE SUELOS

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2.1.4.10 Virus en Clavel. Dentro de los más importantes son: Cuadro 5. Principales virus y control del Cultivo de Clavel. Virus Virus de las manchas anilladas del clavel o Carnation Ringspot Dianthovirus (CRSV).

Síntoma Atenuación de la coloración en los cultivares de flor roja

Control Utilización de plantas sanas obtenidas por cultivo de meristemos

Virus del mosaico de las nerviaciones del clavel o Carnation Vein Mottle Potyirus (CVMV).

Jaspeado foliar difuso cerca de las nervaciones.

Empleo de material vegetal libre de virus. Evitar contaminación por mecánica. Control de su áfido vector.

Virus del jaspeado del clavel o Carnation Etched Ring Virus (CERV).

Pequeñas manchas necróticas en líneas o anillos sobre el limbo de color pardo o púrpura, provocando deformaciones en el limbo

Evitar la contaminación por transmisión mecánica. Control de su áfido vector durante la producción

Debilitamiento o stunt del clavel.

Poliferación anárquica de las yemas axilares, las plantas enfermas toman un aspecto vegetativo achaparrado, con ausencia total de floración

Tratamientos con termoterapia (tratamiento a 37ºC durante varios meses). Se recomienda el cultivo in Vitro de ápices meristemáticos.

Metcalf, 1984, Razo, 1999, http://infoagro.com/flores/flores/clavel.htm, Dic. Esp. Agroquímicas 2004

2.1.5 Cosecha. La flor de clavel durante su desarrollo tienen las siguientes etapas (Álvarez 2005): - Flor naciente - Punto de nuez - Punto de estrella - Punto de bala - Pétalos rectos - Punto de embudo - Flor abierta

2.1.5.1 Clasificación y conformación del ramo. Es clasificado por rigidez, largo del tallo, diámetro de la flor y ausencia de defectos, 25 tallos de clavel estándar por ramo. El ramo es amarrado en la base y en otro punto por debajo de las flores. Se usan etiquetas o bandas elásticas de colores indican las diferentes clases por color (Razo, 1999, Larson, 1988).

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2.2 Biología, clima, sistemas de producción y nutrición del crisantemo asociadas a prácticas de riego y fertilización. 2.2.1. Clasificación taxonómica. El género Chrysanthemum pertenece a la familia Asteraceae y engloba flores de las más antiguas cultivadas. Planta perenne con hojas que pueden ser lobuladas o dentadas, ligulosas o rugosas, de color variable entre el verde claro y oscuro, recubiertas de un polvillo blanquecino que le da un aspecto grisáceo y casi siempre aromáticas. Con inflorescencia en capítulo: femeninas (radiales; se corresponden con la hilera exterior en las margaritas) y hermafroditas (concéntricas; se corresponden con las centrales). El receptáculo es plano o convexo y está rodeado de una envoltura de brácteas (Larson, 1988). La siguiente clasificación para el Crisantemo por Fortune en 1843 (Larson, 1988).

División Magnoliophyta Clase Magnoliopsida Subclase Asteridae Orden Asterales Familia Asteraceae o Compositae Genero Chrysanthemum Especie Morifoliu. 2.2.2. Clasificación de Acuerdo a las Características de la Flor. (Hernández, 1999) 1.- Margaritas o simples 2.- Anémonas 3.- Pom-pom

a) Botón pequeño b) Botón medio c) Botón grande

4.- Decorativas 5.- Estándar

a) Incurvada doble b) Reflexada doble c) Misceláneos d) Pétalos tubulares

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a) Araña b) Montañas c) Pluma d) Cuchara ROCÍO MIXTEGA OLIN

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2.2.3 Clasificación de Acuerdo a la Forma de Cultivo. 1.- Flor de corte. 2.- Flor para maceta. 3.- Flor para jardín 2.2.4 Clasificación de acuerdo a su uso comercial.

Esta clasificación los agrupa

principalmente en dos ramas dependiendo principalmente del empleo que se desee de las flores, además de tamaño y características botánicas de la variedad (Hernández, 1999). 1.- Una inflorescencia (estándar). 2.- Varias inflorescencias. (Spray). 2.2.5 Clasificación de acuerdo al fotoperiodo. Los cultivares híbridos usados en la actualidad responden a días cortos o noches largas. Manejando esta característica adecuadamente se tienen cosechas todo el año, ya que al tener noches largas se promueve la floración; y de acuerdo con la velocidad de respuesta al estimulo son llamados: 1.- Precoces. 2.- Intermedias. 3.-Tardías. 2.2.6 Clasificación de acuerdo a respuesta a Temperatura. 1.- Cultivares Termocero. 2.- Cultivares Termopositivo. 3.- Cultivares Termonegativos. 2.2.7. Multiplicación La propagación se realiza por esquejes terminales que se obtiene de plantas-madre. Los esquejes terminales de 8-10 cm de longitud pueden colocarse directamente en el medio para enraizamiento o almacenarse a 0-3ºC durante unas seis semanas. También pueden emplearse estaquillas obtenidas a partir de los brotes que se desarrollan en la base de esquejes de tallo cuando alcanzan un tamaño adecuado. El enraizamiento normalmente se lleva a cabo en invernadero, el sustrato debe ser poroso. Puede añadírsele un fertilizante de liberación controlada (Larson, 1988)

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2.2.8. Particularidades del cultivo del CRISANTEMO. 2.2.8.1. Longitud del día e iluminación La longitud del día crítica para la iniciación floral es de 13 a 14.5 horas. Cuando se quieren obtener días largos, se aplicará iluminación a media noche,

de

modo

que

ningún

período

nocturno

sobrepase

las

seis

horas

(http://infoagro.com/flores/flores/clrisantemo.asp).

Suelo. El crisantemo prefiere en general una tierra suelta con un buen contenido de materia orgánica (Bañuelos, 1997). El pH óptimo está en el rango de 5.5 a 6.5 unidades (Larson, 1988, Alarcón, 2004) y la CE no deberá exceder los 2.5 dS m-1 (Larson, 1988).

2.2.8.2 Preparación del suelo. Los tratamientos químicos consistente en fumigaciones que controlan la mayoría de los patógenos del suelo o patógenos específicos, tales como Verticillium albo-atrum. Después de la incorporación de mejoradores y fertilizantes pueden prepararse las camas, (108 cm de grosor), con una herramienta puntiaguda marca el suelo de la cama a distancias preestablecidas y ahí se plantan los esquejes en el centro de los cuadros hechos con una cuerda o alambre y que sirven de soporte (Larson, 1988).

2.2.9. Cultivo de las plantas productoras de flor. Los cultivos se sostienen con una malla de alambre que se va elevando conforme van creciendo. Cuando los tallos solitarios de "estándar" o las ramas de las plantas despuntadas ("spray") alcanzan una altura dada (unos 35-50 cm), se les dan días cortos (un mínimo de 12 horas de oscurecimiento), hasta una etapa que no sea afectada por la duración del día, para inducir la floración. Hasta este momento, las plantas deben crecer bajo condiciones de días largos para inhibir la formación de yemas florales. El oscurecimiento debe aplicarse al menos de 21 a 28 días consecutivos, para crisantemos "estándar" y durante un período más largo (unos 42 días) para los "spray". (Alarcón, 2004, Larson, 1980).

2.2.9.1 Podas. Se refieren a tres: despunte, desbrote y desbotone. El despunte consiste en quitar el punto terminal de crecimiento de la planta con el fin de estimular el desarrollo de brotes axilares y permitir varios tallos por planta. El tiempo que se debe de transcurrir de 2 a 4 semanas después de la plantación (http://infoagro.com/flores/flores/clrisantemo.htm). DEPARTAMENTO DE SUELOS

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Existen tres tipos de despuntes; fuerte, suave y apical. En el despunte fuerte, se quitan 5 o más cm de la punta de crecimiento. El despunte suave se realiza sobre el crecimiento nuevo de la planta y se eliminan de 1 a 2 cm de la planta de crecimiento. El despunte apical sólo se elimina el punto de crecimiento y ninguna de las hojas desarrolladas se quita. Es muy importante eliminar completamente el punto de crecimiento para evitar una planta malformada (Larson, 1988). Esta práctica se realiza, eliminando los brotes axilares, que se encuentran por abajo del botón apical. (http://infoagro.com/flores/flores/clavel.htm). Desbrote Es la eliminación de aquellos brotes (2.5 cm) y estos esquejes se pueden enraizar, para producir un extra de esquejes para producción. (Bautista, 2002).

Desbotone Es la eliminación del botón apical cuando tiene un diámetro de 1 cm, si se realiza antes (botón tierno) se obtiene formas hundidas, y si se hace después (botón maduro), se logran formas piramidales. (Bautista, 2002)

2.2.9.2 Estacado. Se coloca una estaca fuerte de 180 cm de altura en el fin de cada surco, líneas de cuerda doble extendida entre las estacas, iniciando 20 cm arriba de el suelo y en una distancia de 30 cm una de otra hasta el fin de la estaca, a medida que la planta crece inserte la cabeza o cima entre el doble de la hebra para su mejor estabilidad, algunos cultivadores usan alambre entre las estacas y amarran el tallo a este con rafia, pero da mejores resultados la cuerda (Bewley, 1950, Bailey, 1958).

2.2.9.3 Sombreado. Bewley (1950), sugiere que el sombrear parcialmente acelera la floración y protege las plantas de el sol brillante lo bastante para producir colores finos, además de que la sombra se puede colocar cuando se plantan los esquejes y esto ayuda, pero se deberá de quitar cuando las plantas se establezcan.

2.2.10 Plantas para Producción. Es necesario mantener a las plantas para producción en un estado vegetativo, para obtener un rápido crecimiento como para alcanzar el tamaño del tallo deseado, una duración del día de 14.5 horas para plantas cultivadas a 15.5 °C es necesario para mantener un estado vegetativo, las plantas se iluminan con lámparas DEPARTAMENTO DE SUELOS

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incandescentes en la noche (iluminación suplementaria), la única condición para que se encuentren en día largo y noche corta es que no completen las 6 horas de oscuridad continuas y dependiendo de las horas luz que tenga el día (Larson, 1988).

2.2.10.1 Floración de plantas productoras. Cuando las plantas han alcanzado la longitud del tallo deseadas (unos 35-50 cm), se les da un tratamiento de día corto, las luces que proporcionaron los días largos se apagan durante un periodo natural de días cortos (invierno) o las plantas se cubren con una tela obscura durante los días largos naturales (verano). La tela obscura puede ser ya sea satín negro o polietileno negro. El oscurecimiento se da mejor por un periodo mínimo de 12 horas (Larson, 1988). El oscurecimiento debe de aplicarse por lo menos de 21 a 28 días cortos consecutivos si se cultiva crisantemos Standard y por un periodo más largo (48 días) si se cultivan los crisantemos tipo racimo o dependiendo de la respuesta de grupo del cultivar (Larson, 1988).

2.2.11 Plagas del crisantemo. A continuación se presentan algunas de las plagas con su control químico: Cuadro 6. Principales plagas y control químico del Cultivo de Crisantemo. Plaga

Control

Materia activa

Dosis

Trips (Frankliniella occidentales). Mosquita de la agalla del crisantemo Liriomyza trifolii). Nematodo Foliar del Crisantemo. (Aphelenchoides ritzemabosi).

Químico

AFIDOX 40 % C. E

125 cm3/100 L de agua

Químico

metomilo pirimicarb, Confidor ® 35 SC

30-40 mL/200L agua 200 a 300 g/ha 1 cm3 / L de agua

Presentación del producto Concentrado emulsionable Polvo soluble Gránulos dispersables Suspensión concentrada

Químico Químico Químico

APLORI Carbofuran Fenamifos

50-100 g/100L agua 4-5l/ha 10.20g/planta

Nematicida biológico Suspensión agrícola Granulado

Minador de la Hoja del Crisantemo (Phytomyza atricormis). Pulgones del Crisantemo (Macrosiphum sanboni).

Químico Químico

Confidor ® 35 SC Tiocyclam

2 cm3 / L de agua 500-750g/ha

Químico Químico Químico Químico

metamidofos pirimicarb, malatión Metomilo

125 cm3/100mL agua 200/300 g/ha 125 a 250 cm3 30-40 mL/200L agua

Suspensión concentrada Polvo soluble

Liquido miscible Gránulos dispersables Concentrado emulsionable Polvo soluble Metcalf, 1984, Razo, 1999, http://infoagro.com/flores/flores/crisantemo.htm, Dic. Esp. Agroquímicas 2004

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2.2.12. Virus del Crisantemo. Se presentan los virus que atacan al crisantemo: Cuadro 7. Principales Virus y control del cultivo de Crisantemo. Virus Virus del Achaparramiento del Crisantemo. Virus del Mosaico

síntoma Palidez del follaje y la disminución del tamaño de las flores, que pueden abrir una semana antes que las normales. Caída anormal de hojas y una reducción del crecimiento.

Virus de la aspergía del crisantemo o Chrysanthemum aspergí cucumovirus (CAV).

Control material vegetal sano Debe evitarse la diseminación por herramientas Eliminar plantas enfermas o sospechosas Cultivo de ápices meristemáticos in Vitro. termoterapia con tratamientos de aire caliente a 37ºC durante varios meses Eliminar las plantas enfermas y controlar los pulgones. -El CAV puede eliminarse por termoterapia con tratamientos de aire caliente a 37ºC durante un mes.

Deformación de la inflorescencia, se reduce el tamaño y cambia el color de las flores. Dichos síntomas florales no siempre se manifiestan el primer año. Un jaspeado, acompañado de una reducción del crecimiento y, más raramente, de un enanismo. Metcalf, 1984, Razo 1999, http://infoagro.com/flores/flores/crisantemo.htm, Dicc. Esp. Agroquímicas, 2004

2.2.13 Enfermedades del Crisantemo. Se presentan las enfermedades más comunes y su método de control. Cuadro 8. Principales enfermedades y control quimico del cultivo de Crisantemo. Enfermedad Roya del crisantemo (Puccinia chrysanthemi)

Roya blanca (Puccinia horiana A) Mancha de las flores: Botrytis cinerea Mycospharella ligulicola Cenicilla (Oidium chrysantemi). Pudrición del tallo (Rhizoctonia solani).

Control Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico Químico

Materia activa mancozeb tebuconazole, propiconazole, bitertanol myclobutanil, Metomilo Azoxistrobin Triforine Benomilo Maneb Zineb clortalonil Captan Azufre benomilo clortalonil Dicloran maycobac

Dosis 200-300g/ha 0.6L/ha 50 mL/100 L agua 75-100 mL/100 L agua 20-40g/100L agua 30-40 mL/200L agua 100 a 300 cm3/ha 1.0L/ha 0.06g/100L 400-500 cm3/100L agua 25-50 cm3/10L agua 175-300g/100L agua 250 g/100L de agua 150-200/100L agua 0.06g/100L 135-170mL/100L agua 3-4kg/ha 100-200g/ha

Presentación del producto Polvo humectante Concentrado emulsionable Concentrado emulsionable Concentrado dispersable Polvo humectable Polvo soluble Concentrado emulsionable Polvo soluble Polvo humectable Suspensión acuosa Suspensión acuosa Polvo humectante Polvo humectable Polvo Polvo humectable Polvo humectante Polvo humectante Funguicida biológico

Marchitez Verticillium albo-atrum Metcalf, 1984, Razo, 1999, http://infoagro.com/flores/flores/crisantemo.htm, Dicc. Esp. Agroquímicas 2004

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2.2.14. Cosecha. Bewley (1950), indica que las variedades de flor simple podrían ser cortadas a una etapa en la que la parte exterior del disco floral este abierta y muestre el polen. Cuando las flores son cortadas se llevan a el empaque.

Bañuelos (1997), menciona que los estadios de cosecha de crisantemo son cuatro: 1.-Flor poco abierta. 2.-Flor un poco más abierta. 3.-Flor casi abierta. 4.-Flor completamente abierta.

Pero los estadios que más se cosechan son el 3 y 4, almacenan, no obstante cuando se cosecha el estadio 2 no se almacena. Se cosecha 10 cm arriba de la superficie del suelo para evitar tejido lignificado ya que este tejido es inversamente proporcional a la vida de florero de las flores (Álvarez, 2005). 3.0 Diagnóstico nutrimental. El diagnóstico agrícola es una herramienta de trabajo que permite “identifica-cuantificar y deducir” con base en un análisis en campo y laboratorio de las características de componentes de suelo/sustrato, agua de riego y material vegetal; con el objeto de relacionar el estado de la nutrición de la planta con dichas características y la práctica de la dosificación de fertilizantes a fin de optimizar los procesos de fertilización de un cultivo bajo unas determinadas condiciones agro climáticas (Figura 1 ).

En el método de diagnóstico nutrimental incluye dos procesos principales: 1.- Adquisición de datos a partir de campo y/o rutinas estandarizadas de laboratorio con trabajos previos de correlación y calibración. 2.- Interpretación de los datos adquiridos, con base a criterios con diferentes normas o referencias, siendo algo más complejo que una simple comparación de valores.

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El proceso de diagnóstico de un sistema de producción con respecto a los componentes agua-suelo-tejidos vegetales- clima y manejo del cultivo se esquematiza en la Figura 1 según Alarcón 2004.

Figura 1. Esquema de un diagnóstico integrado de un sistema de producción agrícola, Alarcón 2004.

3.1 Diagnóstico de aguas de riego. Para la evaluación del agua de riego se tienen en cuenta las características físicas y químicas principalmente, y son escasas las ocasiones en las que se consideran otros factores. La calidad del agua no se puede considerar aisladamente, depende de múltiples factores como son las características del suelo/sustrato, el cultivo, el tipo de riego, el laboreo del suelo, las condiciones climáticas, etc. (Alarcón, 2004). Los objetivos de determinar la calidad del agua de riego en cuanto su uso agrícola se relaciona con la dosificación de los fertilizantes de acuerdo a su composición y ajuste o corrección de sus propiedades analíticas DEPARTAMENTO DE SUELOS

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(acidificación, paliar efectos de iones fitotóxicos, prevenir fenómenos de antagonismos químicos, Alarcón, 2004). El uso de agua de una determinada calidad está determinado por su manejo, por las condiciones que controlan la acumulación de sales y por el efecto sobre el rendimiento de los cultivos. Los efectos del suelo más comunes, según los cuales se evalúa la calidad del agua empleada, son los relacionados con la salinidad, la velocidad de infiltración del agua en el suelo, la toxicidad debida a iones específicos y otros problemas menos habituales. (Alarcón, 2004).

Como principales efectos beneficiosos de la aplicación de aguas de riego, aparte del suministro de agua y algunos nutrientes, señalar la lixiviación de las sales acumuladas y, según la composición química del agua empleada, el mejoramiento de la estructura del suelo por la sustitución en el complejo del suelo y su desplazamiento del sodio adsorbido por medio del calcio y el magnesio contenidos en el agua según Ayers y Westcot (1985) desarrollan criterios básicos actualmente utilizados para la evaluación de la calidad de las aguas de riego. Pero estos criterios adoptar previa adaptación según condiciones agroclimáticas propias de cada zona.

3.2 Diagnóstico de Suelos. El mantenimiento de la fertilidad del suelo es un problema clásico desde tiempos primarios. Evidentemente, la productividad de un determinado suelo vendrá dada, no sólo por la riqueza o fertilidad potencial del mismo, sino que serán claves una serie de factores externos tales como clima, especie cultivada, prácticas culturales, agua de riego empleada, etc. Para este diagnóstico, existen dos formas: una teórica para conocer las propiedades físicoquímicas de un suelo y calcular fórmulas balanceadas para obtener un rendimiento “adecuado”; o bien, en forma práctica mediante la observación y seguimiento de la parcela del cultivo comparando rendimientos de manejo y abonados realizados de un diseño de tratamientos (Alarcón, 2004). Diversas técnicas que se emplean comúnmente dan una indicación del grado de fertilidad del suelo: síntomas de deficiencias de nutrientes en las plantas, análisis de los tejidos de las plantas (Alarcón 2004).

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3.3 Diagnóstico de material vegetal. Lagatu y Maume (1924 y 1926), definieron el diagnóstico del estado de nutrición de una planta por la evolución de la composición química de una hoja convenientemente elegida. La elección de la hoja como órgano de control se fundamentó en el hecho de que diversos órganos o fracción de ellos, tenían distinto poder indicativo. Aún así, pronto se establecieron una serie de normas básicas a tener en cuenta si se pretendía elaborar un diagnóstico correcto: • Conocer el papel de cada bioelemento, lo que permite predecir el grado de interacción entre nutrientes. • Conocer la existencia de factores no minerales, en el medio ambiente o en los procesos intrínsecos de la planta, que pueden modificar los criterios de diagnóstico. 4.0 Función de los nutrimentos y sus concentraciones habituales en agua, suelo y tejidos vegetales. Las plantas superiores forman sus tejidos a partir de sustancias simples que toman de la atmósfera y del suelo. Utilizan el anhídrido carbónico y el oxígeno del aire atmosférico para realizar la fotosíntesis y la respiración y además, absorben del suelo-agua los elementos minerales (Wild, 1988). La fertilidad del suelo depende de las tasas relativas de adición y remoción de sustancias nutritivas, los elementos pueden retenerse con más o menos firmeza en el suelo por enlaces químicos y físicos. La fertilidad se afecta por la absorción de la raíz, y la lixiviación. Los iones disueltos en la solución del suelo están libremente disponibles para las raíces, los que están vinculados a las partículas del suelo sólo son disponibles en solución; de manera que la fertilidad de un suelo depende de la concentración de nutrimentos en solución, no de los elementos nutritivos que contenga (Bidwell, 1979). Se requiere agua, dióxido de carbono y varios elementos minerales para hacer de las plantas verdes en presencia de luz unos organismos completamente autosuficientes (Tisdale y Nelson, 1988).

La cantidad de un ión presente en la solución del suelo y el complejo de intercambio de éste es el resultado de los factores: la calidad total presente (que puede tener relación con la DEPARTAMENTO DE SUELOS

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naturaleza mineral de las partículas del suelo), su capacidad de intercambio, su pH, así como la relativa abundancia de otros iones (Bidwell, 1979). Todas las plantas superiores requieren de los mismos nutrimentos aunque existe un pequeño número de excepciones, por lo cual es necesario que dispongan de todos los nutrimentos esenciales y que la velocidad de suministro de cada uno sea, al menos, igual a la demanda de los cultivos (Wild, 1988).

La presencia en una planta de algún elemento en particular no es prueba de que sea esencial para su desarrollo Arnon y Scout en 1939 (citado por Bidwell, 1979), propusieron los siguientes criterios de esencialidad en la nutrición de una planta: 1.- Su carencia hace imposible las fases vegetativas o reproductivas que componen el ciclo vital de la planta. 2.- La deficiencia es específica por lo que el elemento no puede ser reemplazado por ningún otro, sólo mediante el suministro de éste. 3.-El

elemento

esta

directamente

relacionado

con

la

nutrición

de

la

planta

independientemente de que pueda presentarse otros posibles efectos en la corrección de alguna condición química o microbiana desfavorable del suelo o del medio de cultivo (las funciones biológicas y bioquímicas del elemento deben ser perfectamente conocidas).

Los elementos que se consideran esenciales para las plantas superiores son: Macro elementos: carbono, hidrógeno, oxígeno, nitrógeno, fósforo, potasio, calcio, magnesio y azufre; Micro elementos: hierro, manganeso, cobre, zinc, boro, molibdeno y cloro. Otros elementos que no se consideran esenciales pero que aparecen con cierta frecuencia y que se ha comprobado que en muchos casos resultarían útiles son: cobalto, sodio, silicio, vanadio (Bidwell, 1979; Tisdale y Nelson, 1988, Will, 1988). Por otra parte, la composición mineral en los vegetales varía en función del órgano considerado; y la hoja es la parte más estudiada. Se sabe que el pecíolo es más rico en nitrógeno nítrico, potasio, sodio, magnesio y algunas veces calcio; pero más pobres con respecto al limbo y el conjunto de la hoja cuando se trata de nitrógeno total, fósforo, azufre y hierro. Con el envejecimiento de las hojas los contenidos de nitrógeno, fósforo y potasio disminuyen (son transportados a sitios de demanda y almacenamiento como frutos, tallos y raíces); en tanto el calcio, magnesio y hierro aumentan (Champagnol, 1984). DEPARTAMENTO DE SUELOS

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Cuadro 9. Concentraciones ordinarias de minerales en la solución y en el complejo de intercambio del suelo agrícolas según Bidwell, 1979. Ión

Niveles ordinarios, mgkg-1 Solución del suelo Complejo de intercambio

Ca2+

50-10,000

500-2,000

Mg2+

1-100

20-150

K+

1-50

10-50

Na+ Fe2+ Fe3+ Fe(OH)2+ FeOH2+

10-500

3-50

0.1-25

1-500

Mn2+

0.2-2

1-4,000

Cu2+

0.1

10-1,000

Zn2+ ZnOH+ ZnCl+

0.1-0.3

3-20

PO43HPO42H2PO4-

0.01-20

10-1,000

SO42-

3-5,000

Bajo

Cl-

10-1,000

0

H2BO3HBO32-

0.1-6

Muy bajo

MoO43-