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AUMENTO DE ENEMIGOS NATURALES
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12.1. Introducción: Lucha Macrobiológica por Aumento: consiste en la manipulación de un enemigo natural (depredador o parasitoide), dentro del cultivo, con la finalidad de controlar una especie plaga
12.1. Manipulación de especies entomófagas 12.2. No eficiencia de entomófagos: factores 12.3. Métodos de manipulación de entomófagos
Fundamento: En una determinada área geográfica, los entomófagos (depredadores y parasitoides) autóctonos no son eficientes en el control natural de una especie plaga; si el factor de no eficiencia es modificable o evitable, podemos desarrollar éste método de control macrobiológico.
12.4. Procedimientos de colonización periódica 12.4.2. Liberaciones inoculativas 12.4.3. Liberaciones masivas 12.5. Mejora de entomófagos
En su desarrollo se pueden considerar las siguientes etapas: 1) ESTUDIO PREVIOS 2) TRABAJOS EN EL ÁREA OBJETIVO 3) PUESTA A PUNTO DEL MÉTODO DE CONTROL 4) EVALUACIÓN Y MANTENIMIENTO DE LA EFICACIA
12.6. Otros métodos 12.7. Almacenamiento, transporte y liberación 12.8. Impacto ambiental T. Cabello
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12.2. No eficiencia de entomófagos: factores.
12.1. Introducción:
Para el desarrollo de éste método es necesario evaluar los factores de no eficacia de entomófagos y las posibilidades de éxito con su alteración o manipulación.
ESTUDIOS PREVIOS
FACTORES DE NO EFICACIA: Factores climáticos adversos Planta huésped desfavorable
EXPLORACIÓN Y TRABAJOS EN EL ÁREA OBJETIVO
Escasez de agua y/o alimento Competencia inter-específica Plaguicidas y otros agroquímicos
-Método de cría -Método de liberación -Aspectos logísticos -Control de calidad T. Cabello
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12.2. No eficiencia de entomófagos: factores (cont.). Estudio de los factores de no eficiencia EVALUACIÓ EVALUACIÓN
Factor(es) de no eficiencia MANIPULACIÓ MANIPULACIÓN
NO
SI
PUESTA A PUNTO DEL MÉTODO T. Cabello
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12.3. Métodos de manipulación de entomófagos.
EVALUCIÓN DE FACTORES ADVERSOS: ESTUDIOS EN LABORATORIO: -Biología: J Tablas de vida y temperaturas umbrales J Requerimientos nutricionales de adultos (parasitoides y depredadores con diferente régimen) -Ecología: J Preferencias y aceptación de la planta huésped J Aceptación y adecuación del huésped/presa J Respuesta funcional ESTUDIOS EN CAMPO: - Inventario de enemigos naturales - Niveles de depredación/parasitismo - Tabla de vida en condiciones reales - Análsis e factor principal (Factor-K) - Dinámica de población depredador-presa o huésped- parasitoide: Modelos matemáticos.
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En función de los resultados de la evaluación de los factores de no eficiencia de entomófagos se pueden establecer los siguientes métodos de manipulación: COLONIZACIÓN PERIÓDICA INFESTACIÓN ARTIFICIAL UTILIZACIÓN DE HUÉSPED ALTERNATIVOS, como puede ser: z Planta huésped alternativa + fitófago alternativo z Planta huésped natural + fitófago alternativo + entomófago z Planta huésped alternativa + fitófago alternativo + entomófago (“banker plant”, planta banco o planta reservorio) ALIMENTACIÓN SUPLETORIA DE ADULTOS DEL ENTOMÓFAGO MEJORA DE ENEMIGOS NATURALES
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12.4. Procedimientos de colonización periódica: liberaciones inoculativas
12.4. Procedimientos de colonización periódica: tipos Fundamento: trata de resolver dos problemas de no eficiencia de entomófagos autóctonos: z Retraso de llegada de enemigos naturales a la parcela. z Insuficiente número de enemigos naturales.
En función de lo anterior se puede optar por dos procedimientos: SUELTAS INOCULTIVAS Se liberan una cantidad pequeña de entomófagos, dependiendo el control ejercido de su progenie, durante varias generaciones. SUELTAS INUNDATIVAS O MASIVAS Liberación de una cantidad importante de entomófagos, para se origine una elevada mortalidad de la población de la plaga por su acción, sin tener en cuenta los efectos de su descendencia.
Aplicación: Sobre grandes superficies de cultivo, que presentan bajos rendimientos económicos (p.e.: caña de azúcar). Enemigos naturales dispersos, que tienen dificultad en colonizar el cultivo de forma sincronizada con el fitófago plaga. Ventajas: Menor coste de producción y distribución Mejor control de los primeros focos de la plaga Desventaja: Dificultad técnica de la aplicación: Dosis de sueltas complicada por (1º) debe ser un número y densidad adecuada para asegurar la protección del cultivo, pero (2º) no tan elevado que elimine toda la población de la presa/huésped, deforma que no se aseguren las siguientes generaciones del enemigo natural.
Seguridad y lentitud del control Otras consideraciones: J Son sueltas inoculativas, las aplicadas en otros métodos (“primero la plaga”, “banker plant”).
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12.4. Procedimientos de colonización periódica: liberaciones masivas
12.4. Procedimientos de colonización periódica: liberaciones masivas (cont.)
Aplicación:
Aplicación:
Objetivo común con el control químico: supresión de la población de la plaga a muy corto plazo.
Objetivo común con el control químico: supresión de la población de la plaga a muy corto plazo.
Cultivos y/o plagas de gran importancia económica.
Cultivos y/o plagas de gran importancia económica.
Enemigos naturales exóticos, sin capacidad de establecimiento.
Enemigos naturales exóticos, sin capacidad de establecimiento.
(p.e.: muchos entomófagos empleados en cultivos en invernadero).
(p.e.: muchos entomófagos empleados en cultivos en invernadero).
Ventajas: Menor dificultad técnica Mayor rapidez de actuación
Ventajas: Menor dificultad técnica Mayor rapidez de actuación
Desventaja: Mayores costes de aplicación (ee.nn. y su distribución)
Desventaja: Mayores costes de aplicación (ee.nn. y su distribución)
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12.4. Procedimientos de colonización periódica: liberaciones masivas (cont)
12.4. Procedimientos de colonización periódica: liberaciones masivas (cont)
Eficacia del método: Bioensayos de eficacia en campo, similares a los realizados con pesticidas
Ejemplos (Datos de Johnson, 2000, para EE.UU.) EE.NN. P. persimilis
Cultivo/Plaga
Dosis (no./m2)
Costes ($/m2)
Fresón/Araña roja
31
0,78
E. formosa
Horticolas/M. blanca
10
4,00
Ch. carnea
Algodón/Heliothis
100
0,40
Trichogramma
Algodón/Heliothis
96
0,01
E. formosa
Ch. carnea
Trichogramma
P. persimilis
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12.4. Procedimientos de colonización periódica: liberaciones masivas (cont)
Enemigo Natural
ENTOMÓFAGO EFICIENTE: características de biología/ecología iguales a los otros métodos de Control Biológico antes analizados.
ALMACENAMIENTO Y TRANSPORTE X Influencia sobre la efectividad del entomófago.
12.4. Procedimientos de colonización periódica: liberaciones masivas (cont) Más datos sobre costes (para EE.UU. – Internet, 2005)
Factores clave para eficacia del método:
PRODUCCIÓN DEL ENTOMÓFAGO X Cría viable X Costes X Calidad
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CONTROL DE CALIDAD
MÉTODOS DE SUELTA X Daños al entomófago X Costes
No./recipiente
Precio ($)
Precio/250 Uds ($)
T. minutum
60.000
14,95
0,06
N. cucumeris
25.000
24,85
0,25
Chrysoperla
1.000
14,95
3,74
E. formosa
1.000
17,95
4,49
Aphidius
500
29,95
14,98
Orius
500
59,50
29,75
Aphidoletes
250
28,95
28,95
3
10,95
912,5
Mantis T. Cabello
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12.5. Mejora de entomófagos.
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12.5. Mejora de entomófagos (cont.)
Inicio: Urquijo (1946-50) en Trichogramma minutum (exóctica) 4 años consiguió aumentar (x5) la fecundidad y “ovotropismo” de las hembras. Objetivos:
Cóccidos,
para
mayor
tolerancia
a
J Typhlodromus occidentalis, resistencia a pesticidas, comercialmente disponible para su utilización en manzano y almendro.
X Métodos clásicos: Obtención de razas de los entomófagos autóctonos, con mejor eficiencia en el control del fitófago plaga Obtención de resistencia a plaguicidas
Obtención de entomófagos transgénicos resistentes a pesticidas Iniciado en 1992, con la introducción de marcadores genéticos en el ácaro depredador: Typhlodromus occidentalis Tema 12. Control Biológico. 2006/07. EPS/UAL
J Chrysoperla carnea, resistencia a carbaril J Aphytis melinus, resistencia a carbaril, para establecimiento en campo. J Trioxys pallidus, resistencia a zinfosmetil, para establ. en campo.
X Ingeniería genética:
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Ejemplos: JAphidius lingamensis en temperaturas extremas.
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J Ganaspidium utilis, parasitoide de minador de hojas, resistencia a fenvalerato, colonización en Islas Maldivas
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12.6. Otros métodos. (A) Infestación artificial
12.6. Otros métodos: (B) Utilización de huésped alternativos.
Consiste en introducir la plaga y el enemigo natural para asegurar su establecimiento, de forma que pueda controlar las primeras infestaciones naturales que se presenten en el cultivo. Ejemplo: “pest-in-first” (primero la plaga) empleado en el control de araña roja, mediante el ácaro depredador Phytoseiulus persimilis, en cultivos hortícolas en invernaderos. Realización: Infestación artificial de la plaga (Tetranychus urticae) J 50 ácaros en 1 de cada 5 plantas del invernadero Liberación inoculativa del depredador (P. persimilis) J7-14 días después J 5 depredadores en las mismas plantas anteriores Ventajas/inconvenientes: - Costes (mano de obra) - Infestación con la especie plaga
“Banker plant” – Planta banco o planta reservorio
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Actualmente disponible comercilmente para cultivos en invernaderos.
Ejemplos: J Control de Myzus persicae con Aphidius colemani J Control de Macrosiphum euphorbiae con Aphidius ervi J En estudio: ácaro depredador mediterráneo (Typhlodromis swirskii) en ricino (planta perenne) para el control de mosca blanca y trips.
Ventajas: JPresencia del entomófago en el momento de las primeras infestaciones J Bajos costes: sueltas inoculativas
Inconvenientes: J Mantenimiento y riego del “banker-plant” J Reposición J Sólo aplicable aTema entomófagos olífagos o polífagos 12. Control Biológico.
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12.6. Otros métodos: (B) Utilización de huésped alternativos (cont.:).
12.7. Almacenamiento, transporte y liberación
Macrosiphum euphorbiae con Aphidius ervi
(A) Almacenamiento: Almacenamiento A corto plazo: z La mayoría de entomófagos pueden ser almacenados a temperaturas de 4 a
Preparación del banker-plant: J Maceta con gramínea (trigo o cebada), problemas de crecimiento contínuo. J Infestación con un áfido plaga de gramíneas, pero no de hortícolas, p.e.: Sitobion avenae J Después de colonización por el áfido, exposición al parasitoide (Aphidius ervi) J Después de parasitación, colocación en el invernadero.
15ºC durante periodos de tiempo muy corto (pocas semanas) z Pupa es el estado más idóneo, y estados inmaduros, mejor que el adulto. z Sin embargo, siempre se puede presentar efectos adversos en el potencial del enemigo natural.
Encarsia formosa, capacidad de vuelo de hembras adultas (en porcentaje), según el tiempo de almacenamiento a baja temperatura (Según Lenteren y Tommasini, 2003)
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12.7. Almacenamiento, transporte y liberación (cont.):
12.7. Almacenamiento, transporte y liberación
(A) Almacenamiento: Almacenamiento A largo plazo: z Huéspedes: En algunos casos pueden ser almacenados por periodos de tiempo relativamente largos: -Nitrógeno líquido, 5 años, huevos utilizados en parasitoides de huevos. -UV y refrigeración, huevos de E. kuehniella, empleado como alimento de depredadores (p.e.: Orius) z Entomófago: D. isaea puede ser almacenado a baja temperatura, varios meses sin problemas. z Diapausa: no ha tenido aplicación práctica, salvo algunas excepciones, como son: - Ch. carnea, adulto en diapausa, puede ser almacenado 30 semanas. - O. insidiosus, 8 semanas - Trichograma, pupa en diapausa, 1 año
(B) Transporte:
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Necesidad de transporte al agricultor antes de 48 horas: Efectos de la temperatura. Canibalismo Etc. Medidas paliativas:
Bajo condiciones de baja temperatura: similares a las anteriormente indicadas (pueden existir problemas, en algunos entomófagos, debidos a las temperaturas de transporte)
Envasado conjunto con sustancias inertes y la presa
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12.7. Almacenamiento, transporte y liberación
12.8. Impacto ambiental
(C) Liberació Liberación:
Ninguno con especies autóctonas
Liberación a mano: Æ En cultivos en invernaderos. Æ Con entomófagos que puedan sufrir daños
A evaluar con especies exóticas, que no pueden aplicarse con la metodología de introducción, colonización y establecimiento. (Les sería de aplicación la normativa indicada en el tema 11)
Mecanización del proceso: p.e.: Trichogramma Æ Medios terrestres: Espolvoreador Equipos arrastrados por el tractor Æ Medios aéreos
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