UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA DE LA SELVA FACULTAD DE RECURSOS NATURALES RENOVABLES DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE CIENCIAS AMBIENTALES
INFORME FINAL DE PRÁCTICA PRE PROFESIONAL “CARACTERIZACIÓN DE LOS EFLUENTES EN LOS ESTANQUES DE PISCICULTURA DEL IIAP - HUANUCO”
EJECUTOR
:
GARCÍA NAMUCHE, Josué Junnior
ASESOR
:
Ing. PAREDES SALAZAR, José Luis
INSTITUCIÓN
:
INSTITUTO DE INVESTIGACION DE LA AMAZONIA PERUANA (IIAP) - HUANUCO
LUGAR DE EJECUCIÓN
:
Saipai – Santa Lucia
DURACIÓN DEL TRABAJO
:
15 de Enero al 15 de Abril del 2014
TINGO MARÍA – PERÚ 2014
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INDICE Página I. INTRODUCCIÓN ..................................................................................... 1 1.1. Objetivo general ................................................................................ 2 1.2. Objetivo Específicos ......................................................................... 2 II. REVISIÓN LITERARIA ............................................................................ 3 2.1. Ley de recursos hídricos N° 29338 ................................................... 3 2.1.1. TítuloIII usos de los recursos hídricos ..................................... 3 2.2. Acuicultura ........................................................................................ 4 2.2.1. Aspectos básicos para la crianza de peces ............................. 4 2.3. Definición de calidad de agua ........................................................... 5 2.4. Parámetros fisicoquímicos de calidad del agua ................................ 7 2.4.1. Temperatura ............................................................................ 8 2.4.2. Oxígeno disuelto ...................................................................... 8 2.4.3. pH .......................................................................................... 10 2.4.4. Conductividad eléctrica .......................................................... 11 2.4.5. Sólidos Suspendidos Totales ................................................ 12 2.4.6. Demanda Bioquímicade Oxígeno .......................................... 13 2.5. Aspectos generales del centrode prácticas..................................... 14 2.5.1. Programa AQUAREC ............................................................ 14 2.5.2. Características del área de estudio ....................................... 15 III. MATERIALES Y MÉTODOS ................................................................. 16 3.1. Ubicación de la zona de estudio ..................................................... 16 3.1.1. Ubicación política................................................................... 16 3.1.2. Ubicación geográfica de la estación experimental ................. 16 3.1.3. Clima ..................................................................................... 18 3.1.4. Hidrografía ............................................................................. 18 3.1.5. Fisiografía .............................................................................. 18 3.2. Materiales y Equipos ....................................................................... 18 3.2.1. Materiales .............................................................................. 18 3.2.2. Equipos.................................................................................. 19 3.3. Metodología .................................................................................... 19
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3.3.1. Medición de los parámetros de calidad del agua ................... 19 3.3.2. Determinación de temperatura .............................................. 20 3.3.3. Determinación de pH y conductividad ................................... 20 3.3.4. Determinación de oxígeno disuelto........................................ 21 3.3.5. Determinación de sólidos suspendidos totales ...................... 21 3.3.6. Determinación de demanda bioquímicade oxígeno ............... 22 3.3.7. Estadística descriptiva de los parámetros de calidad de agua ............................................................................................ 22 IV. RESULTADOS ..................................................................................... 23 4.1. Valores obtenidos por cada semana de muestreo .......................... 23 4.2. Análisis a través de la metodología deestadística descriptiva ........ 30 4.3. Comparación de los valores obtenidos con la normativa nacional . 33 V. DISCUSIÓN ........................................................................................... 37 VI. CONCLUSIONES ................................................................................. 39 VII. RECOMENDACIONES........................................................................ 40 VIII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS .................................................. 41 IX. ANEXOS............................................................................................... 43
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INDICE DE CUADROS Cuadro
Página
1. Calidad del agua por el nivel de oxígeno disuelto (OD) ......................... 10 2.Ubicación geográfica ............................................................................... 16 3. Estanques de la estación experimental .................................................. 17 4. Parámetros de calidad de agua que se determinarón ............................ 20 5. Valores de los parámetros del efluente del estanque 1 evaluados semanalmente ....................................................................................... 23 6. Valores de los parámetros del efluente del estanque 2 evaluados semanalmente ....................................................................................... 23 7. Valores de los parámetros del efluente del estanque 3 evaluados semanalmente ....................................................................................... 24 8. Valores de los parámetros del efluente del estanque 4 evaluados semanalmente ....................................................................................... 24 9. Valores de los parámetros del efluente del estanque 6 evaluados semanalmente ....................................................................................... 25 10. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 1 ............................................................................................. 30 11. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 2 ............................................................................................. 30 12. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 3 ............................................................................................. 31 13. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 4 ............................................................................................. 31 14. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 6 ............................................................................................. 32 15. Normativa nacional de descarga de efluentes ..................................... 33
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INDICE DE FIGURAS Figura
Página
1. Croquis de los estanques de piscicultura de la estación experimental .. 17 2. Variación del pH de los efluentes en cada semana ............................... 25 3. Variación de la temperatura de los efluentes en cada semana .............. 26 4. Variación del oxígeno disuelto de los efluentes en cada semana .......... 27 5. Variación de la conductividad de los efluentes en cada semana ........... 27 6. Variación de la DBO5 de los efluentes en cada semana ....................... 28 7. Variación de los SST de los efluentes en cada semana ........................ 29 8. Comparación de los valores obtenidos de DBO5 de cada efluente con la normativa nacional ................................................................................. 33 9. Comparación de los valores obtenidos de pH de cada efluente con la normativa nacional ................................................................................. 34 10. Comparación de los valores obtenidos de temperatura de cada efluente con la normativa nacional ...................................................................... 35 11. Comparación de los valores obtenidos de SST de cada efluente con la normativa nacional ................................................................................. 36 12. Vista panorámica de los estanques de estación experimental ............. 44 13. Toma de muestras en los enfluentes de los estanques ....................... 44 14.Obtención de datos de parámetros fisicoquímicos in-situ ..................... 45 15. Muestras recolectadas de los efluentes de los estanques ................... 45 16. Proceso para la medición de los solidos suspendidos totales .............. 46 17.Paso de la muestra por los filtros para la determinación de los SST .... 46 18. Mapa de ubicación de los estanques de la estación experimental ....... 47
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I.
INTRODUCCIÓN
El agua es una importante fuente para muchas personas alrededor del mundo, especialmente en zonas rurales. El agua puede contaminarse de forma natural mediante la descomposición orgánica o artificialmente con las actividades humanas como actividades extractivas agrícolas y/o minerales. La contaminación del agua puede resultar de baja calidad para consumo, pérdida de fuente de agua, costos extremos de limpieza y remediación, además de los costos altos para el uso de fuentes alternativas de agua y problemas de salud.
Uno de los mayores problemas de la producción acuícola es el aumento de materia orgánica producida por las excreciones de los peces, por el alimento no consumido y por otros insumos adicionados en los estanques (TACON Y FORSTER, 2003). El efluente del estanque va hacia una fuente natural, generando variaciones como disminución en la concentración de oxígeno (OD), aumento en la concentración de sólidos en suspensión (SST), aumento en la demanda biológica de oxígeno (DBO), aumento en la demanda química de oxígeno (DQO), formas variadas de nitrógeno y fósforo, crecimiento exagerado de algas, eutrofización, entre otras (TROELL Y NEORI, 2005).
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El
presente
estudio
está
encaminado
a
caracterizar
fisicoquímicamente los efluentes de los estanques de piscicultura del IIAP. Con los resultados se podrá establecer algunas medidas preventivas y correctivas.
La caracterización de los efluentes de los estanques de piscicultura será de gran utilidad para conocer la influencia del efluente sobre la calidad del agua, a fin de identificar la concentración de materia orgánica para que la institución defina políticas y planes de desarrollo para el manejo del agua.
1.1.
Objetivo general - Realizar la caracterización fisicoquímica de los efluentes de los
estanques de piscicultura de la estación experimental del IIAP.
1.2.
Objetivos específicos - Medir los parámetros de calidad in situ de los efluentes de los
estanques como temperatura, pH, conductividad y oxígeno disuelto. - Medir los parámetros de calidad ex situ de los efluentes de los estanques como sólidos suspendidos totales y demanda bioquímica de oxígeno. - Comparar los valores obtenidos en las mediciones de los parámetros de los efluentes de los estanques con los valores establecidos en los límites de descarga a un cuerpo de agua dulce.
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II.
2.1.
REVISIÓN DE LITERATURA
Ley de recursos hídricos N° 29338 2.1.1. Título III usos de los recursos hídricos
Artículo 35°.- Clases de usos de agua y orden de prioridad: La ley reconoce las siguientes clases de uso de agua: 1. Uso primario.
2. Uso poblacional.
3. Uso productivo.
La prioridad para el otorgamiento y el ejercicio de los usos anteriormente señalados sigue el orden en que han sido enunciados.
Artículo 42°.- Uso productivo del agua: El uso productivo del agua consiste en la utilización de la misma en procesos de producción o previos a los mismos. Se ejerce mediante derechos de uso de agua otorgados por la Autoridad Nacional.
Artículo 43°.- Tipos de uso productivo del agua: Son tipos de uso productivo del agua: 1. Agrario: Pecuario y agrícola; 2. Acuícola y pesquero; 3. Energético; 4. Industrial; 5. Medicinal; 6. Minero; 7. Recreativo; 8. Turístico y 9. De transporte.
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2.2.
La Acuicultura Es el conjunto de actividades, técnicas y conocimientos de cultivo de
especies
acuáticas vegetales y animales.
Es
una
importante
actividad
económica de producción de alimentos, materias primas de uso industrial y farmacéutico, y organismos vivos para repoblación u ornamentación (IIAP, 2007).
2.2.1. Aspectos básicos para la crianza de peces La construcción de estanques y de estructuras hidráulicas representa el mayor esfuerzo en la inversión, el costo de construcción depende de las características del sitio o área del diseño (topografía, tipo de suelo, cobertura vegetal y necesidades de drenaje), de la estrategia de construcción de los estanques, demás instalaciones y también de factores climáticos, entre otros. Para minimizar los costos es necesaria una adecuada planificación de las acciones y de las etapas de implementación. La fase de planificación merece especial atención, pues posibilita una buena evaluación de los riesgos en cuanto a la inviabilidad económica, esclarece las dudas en cuanto a la concepción, diseño y operaciones de las instalaciones,
ahorrando
gastos
innecesarios
en
la
construcción
y
funcionamiento. La construcción de estanques en lugares de difícil acceso, exige el uso más intenso de mano de obra en las cosechas y el traslado de los peces e insumos.
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Las cosechas representan el punto crítico del manejo de una actividad acuícola y se repiten diversas veces a lo largo del año y en toda la vida útil de las instalaciones, imponiendo esfuerzos en mano de obra y una inversión considerable que elevaría los costos de la producción (IIAP ,2007). Según IIAP, (2007) la planificación para el inicio de la actividad acuícola, demanda los siguientes aspectos básicos: -
Inspección ocular del terreno: topografía, textura de suelo,
disponibilidad del agua (cantidad y calidad). -
Construcción de estanques: de acuerdo a la disponibilidad del
-
Disponibilidad de semilla: de ambientes naturales o de centros de
terreno.
producción cercanos. -
Conocer sus hábitos: Planificar qué tipo de pez sembrar: carnívoro,
omnívoro o herbívoro. -
Disponibilidad de insumos: lo más recomendable es utilizar insumos
de la región para abaratar los costos de transporte.
2.3.
Definición de calidad del agua En vista de la complejidad de los factores que determinan la calidad
del agua y la gran cantidad de variables utilizadas para describir el estado de los cuerpos de agua en términos cuantitativos, es difícil dar una definición simple de “calidad del agua”.
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Además,
los
conocimientos
sobre
calidad
del
agua
han
evolucionado a través del tiempo a medida que ha aumentado su demanda en diferentes usos y han mejorado los métodos para analizar e interpretar sus características (SIERRA, 2011). La calidad de un ambiente acuático se puede definir como: a) Una lista de concentraciones, especificaciones y aspectos físicos de sustancias orgánicas e inorgánicas. b) La composición y el estado de la biota acuática presente en el cuerpo de agua. La calidad presenta variaciones espaciales y temporales debido a factores externos e internos al cuerpo de agua. La contaminación de un ambiente acuático significa la introducción por el hombre directa o indirectamente de sustancias o energía lo cual resulta en problemas como: daños en los organismos vivos, efectos sobre la salud de los humanos, impedimento de actividades acuáticas como pesca, etc., e interferencia sobre actividades económicas como el riego, el abastecimiento de agua para la industria, etc. La descripción de la calidad del agua puede realizarse básicamente de dos formas: -
Midiendo variables físicas (turbiedad, solidos totales, temperatura,
etc.), químicos (pH, acidez, etc.), o biológicos (bioensayos). -
Utilizando un índice de calidad del agua. Ambas formas son aceptadas y las mediciones que se requieren se
realizan, ya sea en el campo o en el laboratorio, y producen varios tipos de datos que luego es necesario interpretar (SIERRA, 2011).
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Los peces dependen directamente de una buena calidad de agua para la supervivencia y su crecimiento, y entre los factores que destacan en este aspecto, son el tenor de oxígeno disuelto en el medio, la temperatura y el potencial de hidrogeno ya que son los reguladores de sus actividades metabólicas (SENHORINI Y FRANSOZO, 1994).
2.4.
Parámetros fisicoquímicos de calidad del agua Para saber qué tan pura o qué tan contaminada está el agua es
necesario medir ciertos parámetros. Los parámetros de calidad del agua están clasificados en físicos, químicos y microbiológicos. Como se puede intuir existen muchos parámetros, muchas formas y varios métodos para medir dichos parámetros. Para obviar estos problemas, las agencias internacionales encargadas de vigilar y estudiar la calidad del agua han estandarizado (unificado) los criterios y los métodos para realizar los análisis del agua (EPA, 1999). Las diferentes variables que intervienen es un estanque como son las relaciones tróficas, biocenosis establecidas, capacidad de reciclaje de los nutrientes, autoproducción y autodepuración de los mismos y los parámetros físico-químicos del agua determinan la variación, cantidad y calidad de los organismos que viven en él. Toda especie tiene un rango óptimo para desarrollarse normalmente, el cual está básicamente dado por la temperatura, oxígeno, tipo y cantidad de nutrientes sólidos disueltos, salinidad, pH, dureza, alcalinidad, etc. (RODRIGUEZ et al., 2001).
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2.4.1. Temperatura Según BARRENECHEA (2004), la temperatura es uno de los parámetros físicos más importantes en el agua, pues por lo general influye en el retardo o aceleración de la actividad biológica, la absorción de oxígeno, la precipitación de compuestos, la formación de depósitos, la desinfección y los procesos de mezcla, floculación, sedimentación y filtración. Múltiples factores, principalmente ambientales, pueden hacer que la temperatura del agua varíe continuamente. Según DIGESA (2007), la temperatura es un indicador de la calidad del agua, que influye en el comportamiento de otros indicadores de la calidad del recurso hídrico, como el pH, el déficit de oxígeno, la conductividad eléctrica y otras variables fisicoquímicas. El oxígeno es menos soluble en agua caliente que en agua fría. Es causa frecuente del oxígeno presente en las aguas superficiales, reduciéndose más en los meses de verano. La temperatura aceptable para el consumo humano para una concentración máxima aceptable de 15°C, en temperaturas altas disminuye la concentración de OD, y otras legislaciones consideran la temperatura del agua de la zona con una variación de 3°C. La temperatura recomendable en periodos extendidos de inmersión entre 15-35°C.
2.4.2. Oxígeno Disuelto Según DIGESA (2007), la concentración del oxígeno en el agua depende, de la presión parcial del oxígeno en la atmósfera y de la temperatura del agua, se deduce que la concentración del oxígeno en agua a 25°C es 8.32 mg/L.
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Según ROMERO (1998), el oxígeno disuelto (OD) es la cantidad de oxígeno que esta disuelto en el agua y que es esencial para los riachuelos y lagos saludables. El nivel de oxígeno disuelto puede ser un indicador de contaminación del agua y de los organismos que pueda soportar desarrollen en ella. Generalmente un nivel más alto de oxígeno disuelto indica agua de mejor calidad. Si los niveles de oxígeno disuelto son demasiado bajos, algunos peces y otros organismos no pueden sobrevivir. Gran parte del OD en el agua proviene del oxígeno en el aire que se ha disuelto en el agua. Parte del OD en el agua es el resultado de la fotosíntesis de las plantas acuáticas. Otros factores también afectan los niveles de OD, por ejemplo, en un día soleado se producen altos niveles de OD en áreas donde hay muchas algas o plantas debido a la fotosíntesis. Además, la cantidad de oxígeno que puede disolverse en el agua depende de la temperatura también. El agua más fría puede guardar más oxígeno en ella que el agua caliente. Una diferencia en los niveles de OD puede detectarse en el sitio de la prueba si se hace la prueba temprano en la mañana cuando el agua está fría y luego se repite en la tarde en un día soleado cuando la temperatura del agua haya subido (ROMERO, 1998). El nivel de oxígeno disuelto (OD) presente en un estanque de acuicultura es el parámetro más importante en la calidad del agua. Si no hay una buena concentración de oxígeno disuelto los organismos pueden ser vulnerables a enfermedades, parásitos, o morir por falta de este elemento.
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Además se ha comprobado que no aceptan el alimento cuando se presentan niveles bajos de oxígeno, lo cual conlleva a la pérdida de este insumo, afectando el crecimiento y la tasa de conversión alimenticia (RODRIGUEZ et al., 2001). Cuadro 1. Calidad del agua por el nivel de oxígeno disuelto (OD) Nivel de OD (mg/L)
Calidad del agua
0.00 – 4.90
Mala: Algunas poblaciones de invertebrados empezarán a bajar
peces
y
5.00 – 7.90
Aceptable
8.00 – 12.00
Buena
12.00 a más
Muy buena o al agua puede airearse artificialmente
macro
Fuente: Romero (1998.)
2.4.3. pH Nos indica el comportamiento acido básico del agua. Es una propiedad de carácter químico de vital importancia para el desarrollo de la vida acuática. Es un buen parámetro de carácter general para determinar la calidad de un agua. Habitualmente las aguas naturales tiene un cierto carácter básico con unos valores de pH correspondidos entre 6.5 a 8.5 (ROMERO, 1998). Según DIGESA (2007), el pH es uno de los parámetros indicadores de la calidad del agua. Para que la desinfección con cloro sea eficaz es preferible que sea un pH inferior a 8, es recomendable la medición in situ, de modo que no se modifique los equilibrios iónicos. Debido al trasporte o una permanencia prolongada en recipientes cambia cuando es llevado al laboratorio.
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Según la EPA los valores recomendados son de 6.5 a 8.5 unidades de pH. Según la OMS el pH recomendable de 6.5 y 9.5. Según BARRENECHEA (2004), el pH del agua es de suma importancia para la vida de los microorganismos acuáticos, ya que valores muy altos o muy bajos ofrecen a los microorganismos un medio adverso, con excepción de los quistes de amebas, que soportan pH tan altos como 13 o tan bajos como 1. Por otra parte, la acción de los desinfectantes es fuertemente influenciada por el pH del agua. De acuerdo con su naturaleza, cada desinfectante tiene un rango de pH de mayor efectividad. Sin embargo, la práctica demuestra que cuanto más alcalina es el agua requiere mayor dosis de desinfectante para una misma temperatura y tiempo de contacto.
2.4.4. Conductividad eléctrica Depende de la actividad de los tipos de iones disueltos y de la temperatura a la que se realiza la medida. La conductividad es una expresión numérica de la capacidad de una solución para transportar una corriente eléctrica. Esta capacidad depende de la presencia de iones y de su concentración total, de su movilidad, valencia y concentraciones relativas, así como la temperatura de la medición. El agua pura tiene muy poca conductividad, por lo que la medida de la conductividad de un agua nos da una idea de los sólidos disueltos en la misma.
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De la conductividad eléctrica, que indica la presencia de sales en el agua, lo que hace aumentar su capacidad de transmitir una corriente eléctrica, propiedad que se utiliza en mediciones de campo o de laboratorio, expresadas en micro Siemens/l (µS/l) (DIGESA, 2007).
2.4.5. Sólidos Suspendidos Totales. Según DIGESA (2007), los sólidos suspendidos totales son productos de la erosión de los suelos, tales como limo, arena y virus, son generalmente responsables de impurezas visibles. La materia suspendida consiste en partículas muy pequeñas, que no se pueden quitar por medio de deposición. Pueden ser identificadas con la descripción de características visibles del agua, incluyendo turbidez y claridad, gusto, color y olor del agua. Los sólidos totales pueden afectar negativamente a la calidad del agua o a su suministro de varias maneras. Las aguas con abundantes sólidos totales sueles ser de inferior potabilidad y pueden inducir una reacción fisiológica desfavorable en el consumidor ocasional. Teóricamente, los sólidos suspendidos totales contenidos en las aguas son los residuos secos de los productos disueltos que las aguas poseen en el momento de tomarse la muestra para análisis, es decir partículas como arcillas, limo y otras, que son arrastradas por el agua de dos maneras: en suspensión estable (disolución coloidales) o en suspensión que solo dura mientras el movimiento del agua las arrastra.
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Todo lo que el agua contenga, excepto el agua misma, puede considerarse materia sólida. Sin embargo, la definición de sólido se refiere a la materia que queda como residuos después de la evaporación y del secamiento (JIMENO, 1998).
2.4.6. Demanda Bioquímica de Oxigeno La Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO) mide la cantidad de oxígeno necesaria o consumida para la descomposición microbiológica (oxidación) de la materia orgánica en el agua, se define como la cantidad total de oxígeno requerido por los microorganismos para oxidar la materia orgánica biodegradable (CAN, 2005). La DBO es un indicador importante para el control de la contaminación de las corrientes donde la carga orgánica se debe restringir para mantener los niveles deseados de oxígeno disuelto (SAWYER y MCCARTY, 2001). El aporte de carga orgánica acelera la proliferación de bacterias que agotan el oxígeno, provocando que algunas especies de peces y otras especies acuáticas deseables ya no puedan vivir en las aguas donde están presentes dichos microorganismos (CAN, 2005). Es útil para medir la capacidad de purificación de las corrientes monitoreadas y sirve para orientar normas de control de calidad de los efluentes descargados a estas aguas (SAWYER y MCCARTY, 2001).
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Según DIGESA (2007), la DBO5 expresa la materia orgánica en términos generales, pero no indican su composición, la cual es muy variada. Como su origen proviene de organismos, y sus productos de degradación o de metabolismo, se puede afirmar que la componen proteínas, carbohidratos y lípidos y/o sus productos de degradación: aminoácidos, monosacáridos, hidrocarburos, ácidos grasos, alcoholes, más otros componentes propios de los vegetales como pigmentos. Determina la cantidad aproximada de oxígeno que se requerirá para estabilizar biológicamente la materia orgánica presente. Se define la DBO5 como el monto de oxígeno consumido por microorganismos para oxidar biológicamente la materia orgánica, cuando se incuba una muestra en la oscuridad durante 5 días a 20°C. Es un indicador de consumo de oxigeno por microorganismo, el consumo de esta agua con alto contenido de DBO5 presenta riesgos a la salud.
2.5.
Aspectos generales del centro de prácticas 2.5.1. Programa AQUAREC La finalidad del programa AQUAREC es desarrollar tecnologías y
herramientas de gestión para el uso y conservación del agua y sus recursos, así también mejorar los sistemas acuícolas de producción en la Amazonía Peruana, las cuales tienen como objetivos: -
Fomentar conocimientos e información para el establecimiento de
políticas de gestión del desarrollo que contribuyan al uso y conservación de cuencas en la Amazonía Peruana.
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-
Generar conocimientos biológicos y pesqueros que contribuyan a la
identificación y adopción de medidas de manejo dirigidas a la conservación y uso responsable de los recursos pesqueros en la Amazonía Peruana. -
Desarrollar tecnología económica, social, cultural y ambientalmente
viables, que contribuyan al desarrollo de la acuicultura en la Amazonía Peruana.
2.5.2. Características del área de estudio El IIAP- Tingo María tiene una extensión de 11.5 ha, incluyendo ambientes acuáticos y terrestres. Constituyen la infraestructura para el manejo de cultivo de peces amazónicos, donde se desarrollan actividades de investigación y producción de alevines de Piaractus brachypomus “paco” y Colossoma Macropomum “gamitana” en convenio con el Municipio Provincial de Leoncio Prado y la Universidad Nacional Agraria de la Selva así como también se está iniciando el manejo y mejora del valor agregado de especies forestales de la región Huánuco.
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III.
MATERIALES Y MÉTODOS
3.1. Ubicación de la zona de estudio
3.1.1. Ubicación política La zona de estudio (Estación experimental del IIAP) se encuentra ubicado en la región Huánuco, provincia de Leoncio Prado, distrito de José Crespo y Castillo, accediendo por la localidad de Santa Lucia (Km. 25 de la carretera Tingo María – Auca yacu), siguiendo una vía carrozable de aproximadamente 2 km en sentido Este, próxima al caserío Saipai.
Cuadro 2. Ubicación geográfica. Huánuco Leoncio Prado José Crespo y Castillo Santa Lucía
Departamento: Provincia: Distrito: Localidad:
3.1.2. Ubicación geográfica de la estación experimental del IIAP La zona de estudio posee un área de 11.4792 hectáreas ubicadas en la provincia de Leoncio Prado, departamento de Huánuco, el centroide de la zona de estudio tiene como coordenadas geográficas: Norte :
388020 m.
Este :
8990999 m.
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La estación experimental cuenta con 6 estanques de piscicultura para la investigación y producción de alevines de Piaractus brachypomus “paco” y Colossoma Macropomum “gamitana”.
Cuadro 3. Estanques de la estación experimental. Área (m2)
Profundidad(m)
Estanque 1
1619
100
Estanque 2
1026
100
Estanque 3
1138
80
Estanque 4
1122
80
Estanque 5
1112
80
Estanque 6
1031
50
Estanques
A E6 A E4
A E3
A E2
A = Afluente E = Efluente
A E1
Figura 1. Croquis de los estanques de piscicultura de la estación experimental.
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3.1.3. Clima Según el SENAMHI el área de estudio se encuentra ubicado en la zona de selva alta, por lo que posee un clima tropical, cálido, húmedo y su morfología nos da como resultado climas que varían de acuerdo a su altitud y época del año, con características homogéneas en cuanto a su alta precipitación pluvial.
3.1.4. Hidrografía El área de estudio se encuentra en la cuenca del río Huallaga, sub cuenca del río Tulumayo y micro cuenca Cruz de Motupe.
3.1.5. Fisiografía La fisiografía de la zona corresponde a terrazas medias y altas de 010 % de pendiente, colinas bajas de 10 – 35 % de pendiente.
3.2.
Materiales y Equipos
3.2.1. Materiales -
Papel filtro
-
Embudo de vidrio
-
Matraz erlenmeyer
-
Cooler de tecnopor
-
Vasos precipitados
-
Botellas de plástico y vidrio
-
Etiquetas para rotulado
-
Cuaderno de campo
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3.2.2. Equipos -
Balanza analítica
-
Multiparámetro Thermo, Orion 4 Star
-
Oxímetro DO 6 PLUS
-
GPS GARMIN 60 CSX
-
Cámara digital
-
Estufa
-
Termómetro digital
3.3. Metodología
3.3.1. Medición de los parámetros de calidad del agua Se midió los parámetros de calidad del agua in situ tales como el oxígeno disuelto, temperatura, pH y conductividad y se colectó las muestras de efluentes en botellas de vidrio de 500 ml (al borde) de cada uno de los estanques para la determinación de la demanda bioquímica de oxígeno y sólidos suspendidos totales en el laboratorio de la especialidad de conservación de suelos y agua. La frecuencia de muestreo fue una vez por semana. Se trasladó hacia el laboratorio las muestras en un cooler de tecnopor a 4-8°C para su conservación. Los parámetros que se determinaron son:
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Cuadro 4. Parámetros de calidad de agua que se determinaron Unidad de medida
Método usado
Referencia del método
°C
Campo
2250 B. Standard Methods APHA-AWWA-WEF.
Valor de pH
Potenciométrico
uS/cm
Potenciométrico
2510 B. Standard Methods APHA-AWWA-WEF.
Oxígeno Disuelto
mg/L
Electrodo de membrana
4500-O G. Standard Methods APHA-AWWAWEF.
Sólidos Suspendidos Totales
mg/L
Gravimétrico
2540 D. Standard Methods APHA-AWWA-WEF.
Demanda Bioquímica de Oxígeno
mg/L
Prueba de 5 días
5210 B. Standard Methods APHA-AWWA-WEF.
Parámetros Temperatura
pH
Conductividad
4500-H+ B. Standard Methods APHA-AWWAWEF.
3.3.2. Determinación de temperatura Se realizó la medición de la temperatura con un termómetro digital, esta medición se realizó in situ, en los efluentes de los estanques, esto se realizó cada semana, por un periodo de 1 mes y medio.
3.3.3. Determinación de pH y conductividad Se realizó la medición del pH y conductividad utilizando el equipo Multiparámetro marca Thermo, Orion 4 Star, esta medición se realizó in situ, en los efluentes de los estanques, esto se realizó cada semana, por un periodo de 1 mes y medio.
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3.3.4. Determinación de oxígeno disuelto Se realizó la medición del OD utilizando el método de electrodo de membrana, in situ con un oxímetro DO 6 PLUS, en los efluentes de los estanques, esto se realizó cada semana, por un periodo de 1 mes y medio.
3.3.5. Determinación de sólidos suspendidos totales Este parámetro se realizó en el laboratorio de la especialidad de conservación de suelos y agua, en el cual se utilizó el método de Solidos totales secados a 103°C- 105°C.)
Secar el papel filtro durante una hora a 103 - 105 °C hasta obtener peso constante
Colocar en desecador durante 30 minutos
Pesar el papel filtro antes de usarlo
Colocar el filtro en el embudo y pasar 100 ml de muestra
Secar el filtro en un horno a 103 - 105 °C
Llevarlo al desecador durante 30 minutos y pesar hasta alcanzar peso constante
(A − B)x106 mg SST ( ) = l muestra(ml) Donde: A
= Peso filtro + residuo (g)
B
= Peso filtro (g)
22
3.3.6. Determinación de la demanda bioquímica de oxigeno Este parámetro se realizó en el laboratorio de la especialidad de conservación de suelos y agua, en el cual se utilizó el método de ensayo de DBO a cinco días.
Medir el OD de la muestra de agua y el OD de agua destilada
Tomar 10 ml de muestra y colocar en una botella de DBO de 500 ml y luego aforar hasta el borde con agua destilada.
Incubar a una temperatura constante de 20 °C por 5 días
Medir el OD final. DBO5 = (ODi − ODb) +
Vb (ODb − ODf) Vm
Donde: ODi
= Oxígeno disuelto inicial de la muestra
ODb
= Oxígeno disuelto del agua destilada
ODf
= Oxigeno final
Vb
=Volumen de botella
Vm
=Volumen de la muestra
3.3.7. Estadística descriptiva de los parámetros de calidad de agua Utilizando los valores obtenidos se realizó un análisis a través de estadística descriptiva. Los resultados del procesamiento descriptivo de los datos se colocaron en tablas que muestran para cada parámetro de calidad y efluente los siguientes elementos estadísticos: Media aritmética, valor máximo, valor mínimo, desviación estándar y coeficiente de variación.
23
IV.
4.1.
RESULTADOS
Valores obtenidos por cada semana de muestro.
Cuadro 5. Valores de los parámetros del efluente del estanque 1 evaluados semanalmente. Valores de los parámetros del efluente del estanque 1 Oxígeno Temperatura Conductividad DBO SST Disuelto °C (uS/cm) (mg/L) (mg/L) (mg/L) 28.9 5.67 84.1 63.24 268.2
Fecha
Hora
20/02/2014
8:30
6.79
26/02/2014
8:36
6.73
30
5.38
90
49.68
183.9
07/03/2014
8:41
6.95
29.6
3.38
102.9
77.4
190
13/03/2014
8:45
6.89
28.6
2.62
103.5
101.36
226.5
20/03/2014
6:50
6.63
29.8
3.92
103.6
85.44
242.5
28/03/2014
8:55
6.81
29.4
3.78
97.8
76.28
232.6
pH
Cuadro 6. Valores de los parámetros del efluente del estanque 2 evaluados semanalmente. Valores de los parámetros del efluente del estanque 2 pH
Temperatura °C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
DBO (mg/L)
SST (mg/L)
13:48
6.46
28.6
2.52
163.1
55.59
192.7
26/02/2014
14:00
6.79
31.4
6.18
172.6
52.37
145.6
07/03/2014
14:10
7.2
29.7
2.85
181.9
87.66
168.7
13/03/2014
14:15
6.99
28.6
3.73
183.4
73.29
146
20/03/2014
14:18
6.95
30
4.82
185.2
46.84
171.4
28/03/2014
14:23
6.79
29.7
3.67
176.6
62.67
156.2
Fecha
Hora
20/02/2014
24
Cuadro 7. Valores de los parámetros del efluente del estanque 3 evaluados semanalmente. Valores de los parámetros del efluente del estanque 3 pH
Temperatura °C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
DBO (mg/L)
SST (mg/L)
10:16
6.37
28.1
4.13
76.6
101.7
255.3
26/02/2014
10:21
6.53
31
5.43
90.7
56.62
219
07/03/2014
10:28
7.13
29.4
4.1
88.3
94.41
203.3
13/03/2014
10:35
6.91
28
5.59
93.2
74.65
225.3
20/03/2014
10:42
6.89
29.6
4.65
97.8
62.67
196.1
28/03/2014
10:47
6.56
29.3
4.28
91.3
78.28
227.7
Fecha
Hora
20/02/2014
Cuadro 8. Parámetros Valores de los parámetros del efluente del estanque 4 evaluados semanalmente. Valores de los parámetros del efluente del estanque 4 Oxígeno Temperatura Conductividad DBO SST Disuelto °C (uS/cm) (mg/L) (mg/L) (mg/L) 27.7 4.76 87.9 73.33 245.7
Fecha
Hora
20/02/2014
8:14
6.53
26/02/2014
8:25
6.75
31.7
4.44
104.5
65.67
193.2
07/03/2014
8:35
7.21
28.5
4.15
109.4
105.42
179.8
13/03/2014
8:40
7.36
27.4
6.42
113.5
52.98
222.8
20/03/2014
8:46
6.96
28.3
4.54
103.8
82.06
206.8
28/03/2014
8:59
7.15
27.9
4.38
106.3
76.88
189.9
pH
25
Cuadro 9. Valores de los parámetros del efluente del estanque 6 evaluados semanalmente. Valores de los parámetros del efluente del estanque 6 Oxígeno Temperatura Conductividad DBO SST Disuelto °C (uS/cm) (mg/L) (mg/L) (mg/L) 29 7.85 157.3 77.52 128.3
Fecha
Hora
20/02/2014
11:22
7.12
26/02/2014
11:26
8.19
32
8.1
121.2
52.2
123.6
07/03/2014
11:32
7.91
28.9
7.18
151
102.08
134
13/03/2014
11:38
7.89
28.1
7.77
129.8
51.83
157.3
20/03/2014
11:45
8.76
30.4
8.6
119.6
107.85
109.9
28/03/2014
11:52
7.96
29.9
7.83
145.5
80.33
120.5
pH
9 8.5 8
pH
E1 E2
7.5
E3 7
E4 E6
6.5 6 1
2
3
4
5
6
Semanas
Figura 2. Variación del pH de los efluentes en cada semana.
26
Interpretación: Según la figura 2 los valores más altos de pH lo obtuvo el efluente del estanque 6, los cuales fueron variando en el transcurso de las semanas obteniendo un valor máximo de 8.76 y un mínimo de 7.12, el efluente estanque 3 obtuvo el valor mínimo de 6.37 en la primera semana.
32
Temperatura (°C)
31 30
E1 E2
29
E3
28
E4 E6
27 26 1
2
3
4
5
6
Semanas
Figura 3. Variación de la temperatura de los efluentes en cada semana. Interpretación: Según la figura 3 la temperatura presenta valores variados, el efluente del estanque 6 registró el valor más alto de 32 °C en la segunda semana y el efluente del estanque 4 registró el valor más bajo de 27.4 °C en la cuarta semana.
27
Oxigeno Disuelto (mg/L)
9 8 7 E1
6
E2 5
E3
4
E4
3
E6
2 1
2
3
4
5
6
Semanas
Figura 4. Variación del oxígeno disuelto de los efluentes en cada semana.
Interpretación: Según la figura 4 los valores más altos de OD lo obtuvo el efluente del estanque 6, los cuales fueron variando en el transcurso de las semanas obteniendo un valor máximo de 8.6 mg/L y un mínimo de 7.18mg/L, el efluente del estanque 1 obtuvo el valor mínimo de 2.62 mg/L en la primera semana.
Conductividad (uS/cm)
210 190 170
E1
150
E2
130
E3
110
E4 E6
90 70 1
2
3
4
5
6
Semanas
Figura 5. Variación de la conductividad de los efluentes en cada semana.
28
Interpretación: Según la figura 5 el valor más alto de conductividad lo obtuvo el efluente del estanque 2, los cuales fueron variando en el transcurso de las semanas obteniendo un valor máximo de 185.2 uS/cm y un mínimo de 163.1 uS/cm, el efluente del estanque 3 obtuvo el valor mínimo de 76.6 uS/cm en la primera semana.
110 100
DBO5(mg/L)
90 E1
80
E2 70
E3
60
E4 E6
50 40 1
2
3
4
5
6
Semanas
Figura 6. Variación de la DBO5 de los efluentes en cada semana.
Interpretación: Según la figura 6 la DBO5 presentan valores variados, el efluente del estanque 6 registró el valor más alto de 107.62 mg/L en la quinta semana y el efluente del estanque 2 registró el valor más bajo de 46.84mg/L en la quinta se semana.
29
260 240
SST (mg/L)
220 E1
200
E2
180
E3
160
E4
140
E6 120 100 1
2
3
4
5
6
Semanas
Figura 7. Variación de los SST de los efluentes en cada semana.
Interpretación: Según la figura 6 los SST presentan valores variados, el efluente del estanque 1 registró el valor más alto de 268.2 mg/L en la primera semana y el efluente del estanque 6 registró el valor más bajo de 109.9 mg/L en la quinta semana.
30
4.2.
Análisis a través de la metodología de estadística descriptiva.
Cuadro 10. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 1.
Parámetro
pH
Media 6.80 Desviación estándar 0.11 Máximo 6.95 Mínimo 6.63 Coeficiente de Variación 1.67%
Temperatura °C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
DBO5 (mg/L)
Solidos Suspendidos Totales (mg/L)
29.38 0.54 30.00 28.60 1.83%
4.13 1.18 5.67 2.62 28.57%
96.98 8.21 103.60 84.10 8.46%
75.57 17.83 101.36 49.68 23.59%
223.95 32.06 268.20 183.90 14.32%
Cuadro 11. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 2.
Parámetro
pH
Media 6.86 Desviación estándar 0.25 Máximo 7.20 Mínimo 6.46 Coeficiente de Variación 3.63%
Temperatura °C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
DBO5 (mg/L)
Solidos Suspendidos Totales (mg/L)
29.67 1.04 31.40 28.60 3.50%
3.96 1.35 6.18 2.52 34.07%
177.13 8.30 185.20 163.10 4.69%
63.07 15.12 87.66 46.84 23.97%
163.43 18.01 192.70 145.60 11.02%
31
Cuadro 12. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 3.
Parámetro
pH
Media 6.73 Desviación estándar 0.29 Máximo 7.13 Mínimo 6.37 Coeficiente de Variación 4.29%
Temperatura °C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
DBO5 (mg/L)
Solidos Suspendidos Totales (mg/L)
29.23 1.10 31.00 28.00 3.78%
4.70 0.66 5.59 4.10 14.09%
89.65 7.14 97.80 76.60 7.97%
78.06 17.52 101.70 56.62 22.44%
221.12 20.87 255.30 196.10 9.44%
Cuadro 13. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 4.
Parámetro
pH
Media 6.99 Desviación estándar 0.31 Máximo 7.36 Mínimo 6.53 Coeficiente de Variación 4.43%
Temperatura °C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
DBO5 (mg/L)
Solidos Suspendidos Totales (mg/L)
28.58 1.58 31.70 27.40 5.52%
4.78 0.83 6.42 4.15 17.30%
104.23 8.76 113.50 87.90 8.41%
76.06 17.59 105.42 52.98 23.13%
206.37 24.36 245.70 179.80 11.81%
32
Cuadro 14. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente estanque 6.
Parámetro
pH
Media 7.97 Desviación estándar 0.53 Máximo 8.76 Mínimo 7.12 Coeficiente de Variación 6.65%
DBO5
Temperatura °C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
(mg/L)
Solidos Suspendidos Totales (mg/L)
29.72 1.38 32.00 28.10 4.64%
7.89 0.46 8.60 7.18 5.87%
137.40 16.02 157.30 119.60 11.66%
78.64 23.77 107.85 51.83 30.23%
128.93 16.08 157.30 109.90 12.47%
33
4.3.
Comparación de los valores obtenidos con la normatividad nacional
Cuadro 15. Normativa nacional de descarga de efluentes
Parámetro
Límites de descarga a un cuerpo de agua dulce.
DBO5 (mg/L)
≤ 100
OD (mg/L)
***
pH
5a9
Temperatura (°C)
≤ 35
Conductividad (uS/cm)
***
SST (mg/L)
≤ 100
Fuente: MINAM, Normas de calidad ambiental y de descargas de efluentes: recurso agua
DBO5 (mg/L) 120.00
Limite de descarga
100.00 80.00 60.00 40.00 20.00 0.00 E1
E2
E3
E4
E6
Figura 8. Comparación de los valores obtenidos de DBO5 cada efluente con la normativa nacional.
34
Interpretación: Los valores promedio obtenidos de DBO5 durante todo el tiempo de muestreo de los efluentes de cada estanque cumplen con lo establecido en los límites de descarga a un cuerpo de agua dulce, siendo el efluente del estanque 6 con mayor valor promedio en DBO5 en el agua (78.64 mg/L).
pH 10.00 9.00 8.00 7.00 6.00 5.00 4.00 3.00 2.00 1.00 0.00 E1
E2
E3
E4
E6
Figura 9. Comparación de los valores obtenidos de pH de cada efluente con la normativa nacional
Interpretación: Los valores promedio obtenidos de pH todos los efluentes cumplen con lo establecido en los límites de descarga a un cuerpo de agua dulce ya que no sobrepasan el rango establecido.
35
Temperatura (°C) 35.00 30.00 25.00 20.00 15.00 10.00 5.00 0.00 E1
E2
E3
E4
E6
Figura 10. Comparación de los valores obtenidos de temperatura de cada efluente con la normativa nacional
Interpretación: Los valores promedio obtenidos de Temperatura todos los efluentes cumplen con lo establecido en los límites de descarga a un cuerpo de agua dulce ya que no sobrepasan el límite establecido.
36
SST (mg/L) 225.00 200.00 175.00 150.00 125.00 100.00 75.00 50.00 25.00 0.00 E1
E2
E3
E4
E6
Figura 11. Comparación de los valores obtenidos de Sólidos suspendidos totales de cada estanque con la normativa nacional
Interpretación: Los valores promedio obtenidos de SST, todos los estanques no cumplen con lo establecido en el Límites de descarga a un cuerpo de agua dulce ya que sobrepasan el límite establecido en la normativa.
37
V.
DISCUSIÓN
Según las normas de calidad ambiental y de descargas de efluentes: recurso agua, los valores de pH, temperatura y DBO5 obtenidos para los efluentes de los estanques están dentro de los rangos establecidos en el criterio de límite de descarga a un cuerpo de agua dulce. Los valores de SST obtenidos en los efluentes exceden los rangos establecidos en el criterio de límite de descarga a un cuerpo de agua dulce. Según (ROMERO, 1998), la calidad del agua por el nivel de oxígeno disuelto (cuadro 1) en el rango de O.D. de 0 – 4.9 mg/L se considera agua de calidad mala y de 5 – 7.9 mg/L se considera agua aceptable. El valor de O.D. del efluente del estanque 6 es de 7.89 mg/L se encuentra dentro de lo aceptable y los demás efluentes se encuentran dentro del rango agua de mala calidad. Los datos de pH en las semanas muestreadas en los efluentes de los estanques muestran valores menores de dispersión, estas variaciones pueden deberse a que el pH del agua se debe sobre todo al equilibrio carbónico y a la actividad vital de los microorganismos acuáticos. La secuencia de equilibrios de disolución de CO2 en el agua, y la subsiguiente disolución de carbonatos e insolubilización de bicarbonatos, alteran drásticamente el pH de cualquier agua. Asimismo, la respiración de los organismos heterótrofos en el agua produce dióxido de carbono modificando el pH del medio acuático, (ALVAREZ, 2006).
38
La variación de los valores obtenidos por cada semana de temperatura en los efluentes de cada estanque tiene menor dispersión, estas variaciones pueden verse influenciadas por la relación de la intensidad de la radiación con la profundidad del agua, las capas superiores se calientan más que las capas de agua profunda. Ello causa una diferencia de temperatura a medida que aumenta la profundidad de la columna de agua y eventualmente se produce una estratificación vertical de las diferentes masas de agua (CHANG, 2009). EL oxígeno disuelto, también presenta mayor variación en los efluentes de cada estanque, esto se debe a la que el oxígeno disuelto es un gas muy relevante en dinámica de aguas. Su solubilidad es función de varios factores: temperatura, presión, coeficiente de solubilidad, tensión de vapor, salinidad y composición fisicoquímica del agua. Además, el porcentaje de saturación del oxígeno en agua depende de la turbulencia y de la superficie de contacto entre el gas y el agua (ALVAREZ, 2006). Según (BOYD Y GAUTIER 2000), las descargas durante el intercambio de agua y la cosecha contienen nutrientes, materia orgánica y sólidos en suspensión. Estas substancias representan un potencial de contaminación ya que pueden deteriorar la calidad de agua en los cuerpos receptores. Estos efluentes son considerados como el mayor problema ambiental en el cultivo de los peces; A pesar de que el agua de los efluentes de los estanques no tienen altas concentraciones de contaminantes de materia orgánica y generalmente posee valores aceptables en el pH y temperatura, la variable que parece ser más problemática en cuanto a la calidad del agua en los efluentes es la cantidad de partículas sólidas en suspensión tiende a ser algo más alto a lo establecido a la normatividad.
39
VI.
CONCLUSIONES
1. Los valores de DBO5, pH y de la temperatura de los efluentes de los estanques cumple con las Normas de calidad ambiental y de descargas de efluentes. Los valores obtenidos de solidos suspendidos totales de los efluentes de los estanques no cumplen con las normas de calidad ambiental y descargas de efluentes
2. Los valores promedio de O.D. del efluente del estanque 6, fluctuaron dentro del rango aceptable de calidad de agua, mientras que los valores de promedio O.D. de los efluentes de los otros estanques rango de mala calidad de agua.
3. Los valores obtenidos de los parámetros de pH, temperatura y oxígeno disuelto en el efluente del estanque 6, son mayores a comparación de los valores de los otros efluentes, esto se debe a que el estanque 6 presenta menor profundidad.
40
VII.
RECOMENDACIONES
1. Deben aplicarse los conceptos y recursos de las tecnologías limpias, emisión cero y los estudios de impacto ambiental, e incentivar la investigación científica, procurando una piscicultura sostenible o responsable. Con esto se evitarían problemas a la salud humana y de los peces cultivados. 2. Aplicar métodos que pueden ser utilizados para disminuir el impacto ambiental causado por los efluentes; uno de los método a aplicar seria la disminución de la cantidad de efluentes aplicando mejores prácticas de manejo, como no usar tasa de siembra ni de alimentación superiores a la capacidad de carga del efluente, fertilizar solamente lo necesario para promover el fitoplancton y reducir el recambio de agua tanto como sea posible, esta práctica es efectiva para reducir impactos ambientales en la calidad del agua. 3. Mejorar la calidad del efluente de los estanques antes de ser vertidos al ambiente, las técnicas a utilizar serian la sedimentación, remoción de sólidos hasta la filtración del efluente a través de manglares artificiales, plantas, algas, moluscos, éstos últimos métodos conocidos como biotransformación; un dato importante para la toma de decisiones es que la descarga de un estanque es principalmente contaminante al final del volumen del efluente (20 – 25%) cuando llevan las mayores cantidades de nutrientes y STS.
41
VIII.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ALVAREZ, 2006. Calidad del Agua .Panamá. ACP. 240 p. ANA
2009.
Ley
de
Recursos
Hídricos
N°
29338
[En
línea]:
(http://www.ana.gob.pe/media/532864/ley%2029338.pdf, 20May. 2014). APHA, AWWA, WPCF. 1992. Métodos Normalizados Para El Análisis De Aguas Potables y Residuales. España Ediciones Díaz de Santos, S.A.. 1143p. BARRENECHEA, A. 2004. Aspectos fisicoquímicos de la calidad de agua. Lima, Perú. 58p. BOYD, C. Y GAUTIER, D. 2000. Effluent composition and water quality standards. Global Aquaculture Advocate.66p. CHANG, J. 2009.Limnologia. Guayaquil, Ecuador. ESPOL. 38p EPA. 2002. Office of Water. National Recommended Eater Quality Criteria-Correction. Abril de 2002. EPA-822-R-02-047, ítem 1.4, p. 18. DIGESA. 2007. Análisis Microbiológico de Aguas Residuales por Técnicas de los Tubos Múltiples de Fermentación (NMP). Lima, Perú. 31p. IIAP, 2004. Avances del Desarrollo en la Acuicultura. Editorial R&F, Perú. 57p. IIAP, 2007. Manual de Construcción de Estanques para Piscicultura. Tingo María, Perú. 19p.
42
JIMENO, E. 1998. Análisis de aguas y desagües. Universidad Nacional de Ingeniería. Lima, Perú. 76p. MINAM, Normas de calidad ambiental y de descargas de efluentes: recurso agua. [En línea]:(http://cdam.minam.gob.pe/publielectro/calidad%20ambiental/normasr ecursoagua.pdf, 20May.2014) RODRIGUEZ, G., VICTORIA, D., CARRILLO, A. 2001. Fundamentos de Acuicultura continental. 2ed. Bogotá, Colombia, Grafimpresos Quinteros. P. 418. ROMERO, J. A. 1998. Calidad de Aguas. Editorial, NOMOS S.A. Madrid, España. 410 p. SENHORINI, J. Y FRANZOSO, A. 1994. Influencia da productividad dos viveiros e a contribuicao da racao na larvicultura do “pacu” Piaractus mesopotamicus. Bol tec. CEPTA. 7 (único):27, 40 p. SIERRA, R. 2011. Calidad del agua; Evaluación y diagnóstico. 1ed. Bogotá, Colombia, Ediciones de la U. p. 460. TACON A, Y FORSTER I. 2003. Aquafeeds and the environment: policy implications. Aquaculture. 226p. TROELL M Y NEORI A. 2005. Biological wastewater treatment in aquaculture–more than just bacteria. World Aquaculture. 36 p.
42
IX.
ANEXOS
44
Figura 12. Vista panorámica de los estanques en la estación experimental.
Figura 13. Toma de muestras en los efluentes de los estanques.
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Figura 14. Obtención de datos de parámetros fisicoquímicos in-situ.
Figura 15. Muestras recolectadas de los efluentes de los estanques.
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Figura 16. Proceso para la medición de solidos suspendidos totales.
Figura 17. Paso de la muestra por los filtros para la determinación de los SST.
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Figura 18. Mapa de ubicación de los estanques de la estación experimental.
