MANUAL DE TOMA MUESTRAS

MANUAL DE TOMA MUESTRAS VERSION OO REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00 INDICE 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. 13. 14. 15. 16. 17. 18. 19. 20....
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INDICE

1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10.

11. 12. 13. 14. 15. 16. 17. 18. 19. 20. 21. 22. 23. 24.

Introducción Objetivo Alcance Definiciones Referencias Tomas de muestras LABPRO Instrucciones recepción e ingreso de pacientes Instr. Citación, Identificación del Paciente y Toma de Muestras Instrucciones Identificación de las Muestras Instrucciones Toma de Muestras a. Extracción de sangre venosa b. Obtención de muestras de orina c. Muestras microbiológicas d. Exámenes de hematología y coagulación e. Exámenes de bioquímica y hormonas f. Detección drogas de abuso g. Papanicolao Cuadro resumen contenedores exámenes Instrucciones transporte de las muestras Instrucciones recepción de las muestras Instrucciones muestras urgentes Instrucciones solicitud de exámenes adicionales Instrucciones almacenamiento de las muestras Nómina exámenes subcontratados ANEXO 1 Instrucciones Hemorragias ocultas ANEXO 2 Instr. Rec. Orina 24 horas ANEXO 3 Instr. Ex. Parasitologico seriado de dep. ANEXO 4 Instr. Test de Graham ANEXO 5 Instr. Hidroxiprolina ANEXO 6 Instr. Espermiograma ANEXO 7 Instr. Catecolaminas

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Instr. Metanefrinas

26. 27. 28. 29. 30. 31. 32. 33.

Form. Envio de muestras Consentimiento VIH Cadena custodia drogas Instr. Frotis hemogramas Instr. Carga de glucosa Instr. Orina pacientes sexo femenino Instr. Orina pacientes sexo masculino Listado de exámenes.

ANEXO 9 ANEXO 10 ANEXO 11 ANEXO 12 ANEXO 13 ANEXO 14 ANEXO 15 ANEXO 16

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1.- INTRODUCCION

LABORATORIO CLINICO PROVIDENCIA LTDA, comprometido en brindar el mejor y más oportuno servicio de apoyo al diagnóstico y manejo clínico de sus pacientes, pone a su disposición el presente Manual de Toma de Muestras con el propósito de establecer el marco teórico-práctico que debe regir a todos los procedimientos involucrados en la fase pre-analítica, para garantizar la máxima calidad y cumplir con las expectativas y necesidades de nuestros pacientes Nuestro Laboratorio cuenta con tecnología de última generación, un equipo de profesionales altamente motivado y técnicamente competente para satisfacer la demanda clínica, y por sobre todo, ofrece su mejor disposición para que cada determinación de laboratorio que se realice, alcance la mayor correlación clínicalaboratorio. Finalmente , el Director Técnico esta permanentemente a disposición de los Médicos , para colaborar en el diagnostico e interpretación de la pruebas de laboratorio y asesorar, si se requiere, en la toma de decisiones en situaciones clínicamente complicadas, para otorgar a nuestros pacientes la mejor oportunidad en el diagnostico, tratamiento y control evolutivo de su situación clínica.

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OBJETIVO

El objetivo de este Manual es contar con una referencia normalizada de todas las acciones que intervienen en la etapa pre-analitica de los examenes de laboratorio, para garantizar resultados confiables, oportunos, trazables y representativos.

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ALCANCE Este Manual de aplica a todas las unidades de toma de muestras de LABPRO.

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DEFINICIONES -

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Laboratorio Clínico procesador: Es el laboratorio que analiza las muestras de diagnóstico procedentes de las distintas salas de toma de muestras. Muestra: Cualquier material humano, incluyendo, entre otros, secreciones, sangre y sus componentes, fluidos corporales y tejidos a los cuales se les pueda efectuar exámenes de laboratorio. Estabilidad de la Muestra: Capacidad de una muestra, cuando se mantiene en unas condiciones adecuadas, de mantener los valores de sus analitos o componentes lo más cercano a sus valores reales originales. Sala de Toma de Muestras: Espacio físico donde los profesionales de salud realizan tareas de obtención, recepción e identificación de muestras biológicas humanas. En este manual de distinguen: Sala de Toma de Muestra Interna: Ubicadas en las dependencias propias de LABPRO, atendidas por su propio personal.

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Sala de Toma de Muestras Externa: Pertenecientes a unidades dentro de servicios clínicos o centros médicos, en que personal externo a LABPRO realiza el proceso de toma de muestras de acuerdo a lo especificado en este Manual y la legislación vigente. Tomadoras de muestras: Personal instruido y competente para realizar la toma de muestras de distintos tipos y para distintas clases de examenes, con título profesional de Técnico en Enfermería o Laboratorio Clínico. Instructivo de Toma de Muestras: Documento claro y conciso que normaliza los pasos a seguir en la actividad de Toma de Muestras, según las caractersticas de cada una. Recipiente Primario: Contenedor adecuado (tubo, frasco, etc.,) donde se deposita directamente la muestra biológica a analizar. Recipiente Secundario: Contenedor adecuado que permite transportar uno o más recipientes primarios. En nuestro laboratorio corresponde a gradillas y bolsas plásticas. Recipiente Terciario: Contenedor adecuado que permite transportar uno o más recipientes secundarios. En nuestro laboratorio corresponde a cajas refrigeradas. Tiempo de Respuesta: Es el tiempo que transcurre desde que se recepciona una muestra en el laboratorio y entra en procesamiento, hasta que se emite el resultado de los examenes. Muestras Urgentes por Solicitud Medica:Son aquellas que requieren un resultado inmediato para tomar decisiones terapeuticas urgentes. Muestras Urgentes por Caracteristicas del Proceso: Son aquellas muestras que, por las caracteristicas propias del analito a determinar o cuantificar, se deben procesar de inmediato. Valores Críticos o de Alerta: Corresponde a un resultado de exámenes que pueden representar un riesgo para la integridad del paciente. Alícuota: Volumen pequeño de muestra, que se separa de la muestra original para ser guardado en condiciones especiales, con el objeto de poder realizar estudios posteriores, en caso de ser requeridos y permite su trazabilidad a la muestra de origen.

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Combrobante de Laboratorio: Registro impreso que permite el actual sistema computacional de LABPRO al ingresar una solicitud de exámen.

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Director Técnico de Laboratorio: Es el profesional que tiene la competencia necesaria para asumir la responsabilidadante la autoridad sanitaria, de la calidad de los analisis que se realizan en un laboratorio clínico, de acuerdo a la legislación vigente.

REFERENCIAS a.NCh 2547 Of. 2003/ISO 15189 para la calidad y la competencia. b.-

Laboratorios Clínicos. Requisitos particulares

NCh 9000 – 2001. Fundamentos y Vocabulario.

c.Requisitos de transporte de muestras de diagnóstico para garantizar la estabilidad de sus propiedades biológicas.. Generalitat de Catalunya. Departamento de Sanidad y Seguridad Social. d.Manual de toma de muestras para estudio bacteriológico, parasitológico y micológico. Departamento de Laboratorio Clínico repartición Microbiologia, Hospital de Clínicas Facultad de Medicina Montevideo – Uruguay 2004. e.-

Decreto 433 MINSAL

f.-

Manual Toma de Muestras Laboratorio Bionet.

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TOMAS DE MUESTRAS LABPRO Centro Medico Medicuba

Salesianos 1178

San Miguel

Centro Medico Trinidad

Departamental 9000

PAC

Centro Medico 22 ½

Gr Avenida

La Cisterna

Centro Medico Cimar

Eliodoro Yañez

Providencia

INSTRUCCIONES RECEPCION e INGRESO de PACIENTES 1.El personal encargado de recibir al paciente en las dependencias de LABPRO debe saludar cordialmente al paciente, identificandose claramente con su nombre y apellido 2.Solicite al paciente la orden de exámenes, verifique códigos y previsión, proceda a vender el bono y/o cobrar las prestaciones según corresponda. Solo ingrese las prestaciones claramente identificadas en la solicitud, no interprete la orden, si alguna prestación no esta claramente, consulte al médico solicitante, no ingrese prestaciones al sistema si no tiene la seguridad de lo solicitado. 3.Si corresponde, le entregará al paciente los instructivos necesarios para la preparación de los examenes, que se encuentran al final de este Manual como Anexos. 4.Informe al paciente el tiempo de espera para la obtención de resultado y como se puede acceder a ellos (retiro en la unidad de toma de muestras o vía Web si el servicio esta disponible en su sucursal).

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5.Ingrese los datos al sistema informático del laboratorio, INFOLAB,agregando observaciones de hipótesis diagnóstica y los datos del médico solicitante que faciliten su contacto en caso de ser necesario. 6.-

Solicite al paciente un número telefónico de contacto y el de su médico tratante.

7.Agradesca al paciente su preferencia e indiquele que a continuación será llamado para la obtención de la muestra, en un tiempo no inferior a los 5 minutos para garantizar una óptima extracción. 8.Si su unidad de toma de muestra no posee sistema informático del laboratorio, debe incluir toda esta informacion en la planilla para envío de muestras que le proporcionará el laboratorio, la que se adjunta como Anexo 9.

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INSTRUCCIONES – CITACION – IDENTIFICACION DEL PACIENTE Y TOMA DE MUESTRA 1. Una vez ingresados los datos al sistema informático, personal de toma de muestras llamará al paciente a la unidad de toma de muestras. 2. Junto con saludar e identificarse, le preguntará al paciente su nombre para realizar una identificación activa del paciente, Si corresponde a VIH o Drogas de abuso, le solicitará además su cédula de identidad. 3. Una vez realizada la verificación, le explicará el procedimiento a efectuar para la obtención de la muestra (punción venosa, muestra de orina, etc.) y responderá las consultas sobre el procedimiento. Limitándose a su labor y cargo, sin emitir ningún comentario adicional. 4. Si corresponde, le solicitará al paciente el consentimiento informado en el caso de exámen de VIH o la Cadena de la Custodia en el caso de drogas de abuso, documentos que están disponibles en todas las unidades de toma de muestras LABPRO. Si el paciente es menor de edad, el apoderado deberá llenar estos instrumentos. Ambos instrumentos son de carácter obligatorio y sin ellos no se puede realizar la toma de muestra, ambos se detallan en el Anexo 10 y 11 respectivamente. 5. Prepare todo el material necesario para el procedimiento con anterioridad a la obtención de la muestra (previo a ligar al paciente)

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6. Previo a la extracción, consultar al paciente por horas de ayuno, si es un nivel plasmático, la dosis del fármaco; si está sometido a algún tratamiento médico y cualquier dato que pueda contribuir a la interpretación de los resultados. Además, consulte siempre por problemas previos en extracciones de sangre (lipotimia). Si la respuesta es afirmativa, obtenga la muestra con el paciente recostado en una camilla. 7. En pacientes menores de 12 años y mayores de 60, ademá de todo aquel paciente que manifieste padecer diabetes o problemas metabólicos, si se les solicita determinación de glucosa, HOMA o perfil bioquímico, incluir siempre tubo gris (fluoruro). 8. En el caso de orina completa, sedimento y urocultivo, realizar el aseo previo a la obtención de la muestra. Si el paciente no accede, dejar constancia de esto en la sección observaciones del sistema informatico del laboratorio. Consultar al paciente si esta en tratamiento con antibióticos y consignar esta información en el sistema informático del laboratorio, sección observaciones de toma de muestra. 9. Si por alguna razón debe quedar pendiente la obtención de una de las muestras solicitadas (ej. Orina de 24 horas), dejar constancia de esto en la sección observaciones, especificando lo que queda pendiente, la fecha y el nombre de quien efectúa la observación. 10. En el caso de clearence de creatinina, la muestra de sangre debe ser obtenida con un maximo de 48 horas de diferencia con la muestra de orina, por lo que se suguiere realizar los exámenes de sangre el día en que el paciente lleva la muestra de orina al laboratorio y no antes para evitar confusiones. Incluir el peso y talla del paciente. 11. En el caso de antígeno prostático específico abstinencia sexual de al menos 48 horas.

(PSA), el paciente debe tener una

12. El tiempo de ayuno recomendado es de mínimo 8 horas y máximo 12 horas, en caso de tiempos diferentes, y si el paciente insiste en la realización de los exámenes, dejar constancia en sección observaciones. 13. Frente a cualquier duda, consultar siempre a su superior directo.

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14. Para las solicitudes de curva de tolerancia a la glucosa, resistencia a la insulina o pruebas post carga de glucosa, referirse a instrucciones detalladas en Anexo 13 15. Preocuparse de que el paciente no presente molestias antes de despedirlo de la toma de muestra y al hacerlo, agradecer su preferencia.

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INSTRUCCIONES IDENTIFICACION DE LAS MUESTRAS

Una vez obtenida la muestra, rotular el o los contenedores en la presencia del paciente, si cuenta con el sistema informático del laboratorio, obtenga las etiquetas respectivas y rotule los contenedores, siempre de manera posterior a la obtención de la muestra. Si no cuenta con el sistema informático del laboratorio, rotule los contenedores con el nombre y los dos apellidos del paciente, con letra clara, además de incluir la fecha de obtención de la muestra. No olvide incluir cualquier dato que pueda contribuir a la interpretación de los resultados, además de consultar al paciente por el ayuno o cualquier otra información de utilidad. En caso de urocultivo, consultar si esta en tratamiento con antibióticos por cualquier razón. Todos estos datos deben ser ingresados al sistema o registrados en la planilla de envío de muestras.

10 INSTRUCCIONES TOMA DE MUESTRAS 1. Extracción de Sangre a.- Sangre Venosa De acuerdo a las Normas Internacionales emitidas por el Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) vigentes en la actualidad, existen sólo dos formas de obtener sangre venosa de un paciente, estas son: LABPRO

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La tradicional y disponible en todas las tomas de muestras de cualquier laboratorio, consiste en la extracción mediante jeringa, aguja, o mariposa para venopunción, usando contenedores que no poseen vacío en su interior. Muestra obtenida mediante sistema cerrado al vacío.

Las muestras deben obtenerse por uno u otro método, jamas debe mezclarse la metodología, esto quiere decir, si no se dispone del sistema al vacío completo y solo se tiene tubo al vacío, una vez obtenida la muestra, ésta debe vaciarse al tubo destapando primero éste y trasvasijando a través de las paredes como en el sistema tradicional. Jamas debe trasvasijarse la muestra pinchando con aguja el tapón del tubo al vacío, el traspaso de muestra a través de aguja corriente es el más importante factor de hemolisis en las muestras. Es imprescindible contar con todos los materiales e insumos necesarios para el procedimiento, previstos con anterioridad, las improvisaciones generan riesgos de bioseguridad y deterioran la calidad de atención a los pacientes. Debe disponerse de guantes, tórulas, parche, agujas, jeringas, adaptador para sistema al vacío, contenedores en volumenes adecuados, ligadura, alcohol, lapiz o etiquetas para rotular las muestras una vez obtenidas, al lado del paciente.

A. Transmitir tranquilidad al paciente instruyéndole respecto al procedimiento a realizar, especialmente si se trata de jovenes o niños. Ante pacientes aprensivos o que manifiestan abierto temor se recomienda tomar muestras con el paciente acostado sobre camilla o en silla de respaldo reclinable. Debe verificarse que el paciente no contiene ningún tipo de alimentos u objetos en su boca. Ante quejas o sensaciones puntuales de malestar por parte del paciente es importante acoger su planteamiento, la preservacion de la buena relación paciente – operador garantizará la buena calidad de la atención así como en casi todos los casos, impedirá la emisión de un reclamo o melestia mayor. B. Verificar la adecuada condición técnica del material a utilizar, ligadura, tubos con anticoagulante visible, etc. LABPRO

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C. Seleccionar el sitio de punción y proceder a limpiarlo. Utilizar alcohol de 70°, dejar evaporar antes de puncionar. Para determinación de alcohol en sangre, usar agua destilada para limpiar.

Jamas debe obtenerse muestras para análisis de laboratorio desde la misma extremidad por donde se pasa fleboclisis esta situación, siempre altera el valor predictivo de los exámenes por tanto, aún cuando sean realizados por el laboratorio, no serán útiles para el estudio o diagnostico clínico.

D. Orden exigido en la obtención de muestras. 1° Tubo sin aditivo (rojo/amarillo). 2° Tubo para exámenes de coagulación (celeste). 3° Tubos con aditivos (lila, verde, gris, etc.).

E. Sólo una vez obtenidas las muestras, identificarlas al lado del paciente. Se prohibe rotular o etiquetar los contenedores antes de obtener la muestra. F. Luego de obtenidas las muestras, eliminar el material cortopunzante en los contenedores destinados para ello.

b.- SangreArterial (Gases Arteriales) a) En el caso de necesitar una muestra de sangre arterial, este procedimiento sólo es realizado por las enfermeras encargadas de las tomas de muestras o personal debidamente autorizado por la dirección técnica.

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b) Detecte la ubicación de la arteria mediante la busqueda del pulso. Luego, realice la punción arterial. Al finalizar, comprima la zona por al menos 3 minutos para evitar la formación de hematomas. Utilce jeringa heparinizada y mantenga la muestra en cadena de frío. Envíe de inmediato a laboratorio para su procesamiento.

2.-

Obtención de Muestras de Orina. Orina completa, sedimento de orina u urocultivo. a. La muestra idónea es la orina de segundo chorro, de la primera micción de la mañana, de lo contrario, se sugiere tomar una muestra con un mínimo de tres horas de retención. b. Técnica en mujeres. Este examen se realizará en la sala de baño de toma de muestras, donde se le entregará al paciente un frasco limpio y seco, y se aplicará el procedimiento. Las instrucciones al paciente se incluyen en el anexo N° 6. Cuando el paciente no pueda realizarlo, o solicite ayuda, personal del laboratorio realizará el aseo genital. Material necesario: -

Gasas o tórulas estériles. Jabón neutro. Recipiente e boca ancha con tapa rosca hermético y estéril.

Procedimiento: -

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Lavado de manos clínicos de la persona que reliza el aseo.

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Con guantes de procedimiento, separar los labios mayores, con una gasa o tórula empapadas en agua jabonosa (jabón neutro) lavar la vulva arrastrando siempre de adelante hacia atrás, en forma repetida (cambiar la tórula o gasa en cada arrastre). Enjuagar cuidadosamentecon bastante agua para eliminar los restos de jabón.

Toma de Muestra: -

Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado, sin tocar los bordes. Elimine la primera parte de la micción (primer chorro). Recolecte la orina restante (2° chorro), llenando hasta la mitad del frasco. El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con su pierna o ropa. Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior. Tape cuidadosamente el frasco, y compruebe que quede bien cerrado, entréguelo a la persona que lo atendió. Utilice papel absorbente del dispensador para secar el frasco por fuera, en caso de que se haya mojado con orina. Lavarse las manos después de este procedimiento. Si requiere ayuda, solicite asistencia al personal de toma de muestras.

c. Técnica en hombres Este examen se realizará en la sala de baño de la toma de muestras, donde s e le entregara al paciente un frasco limpio y seco y se le dará la instrucción. Cuando el paciente no pueda realizarlo, o solicite ayuda, personal del laboratorio realizará el aseo genital.

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Material necesario: Gasas o tórulas de algodón. Jabón neutro. Recipiente de boca ancha con tapa rosca hermético y estéril.

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Procedimiento: Lavado de manos del paciente.

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Retraer en forma suave el prepusio, limpiar el glande desde la uretra con jabón neutro. Enjuagar cuidadosamente con bastante agua para eliminar los restos de jabón. Toma de muestra: Abra cuidadossamente el frasco que se le ha entregado, sin tocar los bordes. Mantenga el prepusio retraido durante todo el procedimiento. Comienze a orinar y elimine el primer chorro (+/- 10ml). Recolecte la orina restante (2° chorro), llenando hasta la mitad del frasco. El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con su ropa o pierna. Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior. Tape cuidadosamente el frasco, y compruebe que quede bien cerrado. Utilice papel absorvente del dispensador para secar el frasco por fuera, en caso de que se haya mojado con orina. Lavarse las manos después de este procedimiento.

d. Técnica en niños/niñas. Personal del laboratorio realizará el aseo: realizar aseo genital con gasas o tórulas según lo descrito anteriormente. Material necesario: -

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Gasas o tórulas de algodón. Jabón neutro. Recipiente de boca ancha con tapa rosca hermético y estéril. Recolectores plástico estériles.

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Procedimiento: -

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Una vez realizado el aseo, secar prolijamente los genitales con toalla nova y colocar el recolector cuidando de no contaminarlo y que éste quede perfectamente adherido a la piel. Si el niño no orina al cabo de 30 minutos (sólo para urocultivo)debe cambiarse el recolector con el mismo procedimiento anterior, un máximo de dos veces, evaluar la posibilidad de un tercer recolector. Cuando el niño/a orina, debe retirarse el recolector inmediatamente y traspasar la muestra al interior de un frasco estéril. Tapar inmediatamente el frasco. Rotular el frasco con el nombre y dos apellidos del paciente. Si el envio no es inmediato, mantener muestra refrigerada a 4°C. Lavarse las manos después de este procedimiento.

Orina de primera micción. Indicada en estudio de infección por N. gonorrhoeae, Chlamydias y otras uretritis no gonocócicas. Procedimiento: -

Si la muestra no corresponde a la primera orina matinal, esperar 3 a 4 horas sin micción para tomarla. No forzar diuresis. Realizar aseo genital según lo descrito. Depositar los primeros 10 a 20 ml de orina en frasco estéril Rotular en el frasco que corresponde a orina de primera micción. Transportar al laboratorio en forma inmediata. + Si no se ha solicitado cultivo de Neisseria gonorrhoeae (gonococo) la muestra debe mantenerse refrigerada a 4°C. + Si se solicita cultivo de Neisseria gonorrhoeae (gonococo) la muestra no debe refrigerarse. PARA DETERMINACION BIOQUIMICAS CON ORINA AISLADA, OBTENER LA MUESTRA COMO SI FUERA ORINA DE SEGUNDO CHORRO.

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Muestras Microbiológicas.

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a. Introducción. El principal objetivo del estudio microbiológico es el aislamiento de los agentes causales de una probable infección y la orientación en el uso adecuado de antimicrobianos en el tratamiento del paciente. Los agentes microbiológicos pierden rápidamente viabilidad al ser retirados del hábitat específico del huésped, por lo que se hace indispensable optimizar la conservación de la muestra y acortar al máximo el tiempo entre su recolección y la siembra que se realiza en el laboratorio. Toda la información diagnóstica que el laboratorio de microbiología puede proporcionar, depende de la calidad de la muestra recibida. Por ello, una muestra sin la técnica adecuada o mal transportada determinará un posible fallo en la recuperación de los agentes patógenos, que puede inducir a errores diagnósticos, e incluso a un tratamiento inadecuado del paciente.

Recomendaciones generales: • • • • • •



La toma de muestra debe realizarse en condiciones de máxima asepsia, evitando contaminaciones ambientales, del personal y del propio enfermo. Es muy importante realizar siempre un lavado de mano clínico adecuado antes y después de tomar una muestra. El personal que toma la muestra debe utilizar los elementos de protección personal (guantes, mascarilla desechable y antiparra) cuando haya riesgo de contacto con fluidos. La muestra debe transportarse en envases adecuados con cierres a prueba de derrames o fugas. La muestra debe etiquetarse con el nombre del paciente, el servicio solicitante, el tipo de muestra, y la fecha y hora de la recolección. Se debe tomar una cantidad de muestra adecuada a la petición y al número de exámenes solicitados. En ocaciones una escasa cantidad de muestra puede ser la causa de falsos negativos. El material destinado a cultivo no debe estar en contacto con sustancias desinfectantes o anestésicas, siempre que sea posible.

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La muestra se debe recoger, siempre que sea posible,antes de iniciar cualquier terapia antimicrobiana. Se debe evitarel contacto de la muestracon flora bacteriana normal del paciente, con el objeto de asegurar que la muestra refleje lo mejor posible el agente causal de la infección. El envío al laboratorio de microbiología debe ser lo más rápido posiblecon objeto de asegurar la viabilidad de los microorganismos, evitar que proliferenlas bacteria que componen la flora normal y acortar el tiempo de contacto con sustancias inhibitorias utilizadas en la toma de muestra.

b. Procedimiento para realizar antisepsia de piel. • Aplicación: La antisepsia de piel con alcohol y povidona yodada debe realizarse antes de cualquier procedimiento de toma de muestra en que se rompa la barrera epidérmica (aspiración con jeringa, punciones diagnósticas, etc.). Esto es de principal importancia en la toma de muestras de hemocultivos, ya que la toma de muestras es el principal factor de contaminación con flora cutánea. • Material necesario: Alcohol etílico o isopropílico al 70% Povidona yodada Compresas estériles Guantes estériles Guantes estériles y de procedimiento • Técnica Con guantes de procedimiento, limpiar la zona con compresas estériles empapadas en alcohol, del centro hacia la periferia. Abarcar una zona de +/- 10 cm, alrededor de la zona a puncionar. Repetir la operación con povidona. Dejar secar por dos minutos para que la povidona ejerza su acción antiséptica (en pacientes con hipersensibilidad al yodo, utilizar alcohol dos veces consecutivas en lugar de povidona). -

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Solamente tocar la zona con guantes estériles después de realizada la antisepsia.

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c. Cultivo corriente. Incluye las siguientes muestras: 1. Muestras del tracto respiratorio superior I. Faringo-Amigdalino. Material Necesario. * Baja lengua * Tórula de algodón con medio de transporte (Stuart o Amies) Técnica. * Bajo visión directa, con la ayuda del baja lengua, tocar con la tórula en faringe posterior y criptas tonsilares, especialmente las áreas con exudado, membranas o inflamación. * No tocar nunca la mucosa oral, lengua o úvula. * Introducir la tórula inmediatamente al medio de transporte. -

Transporte y Conservación.

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* Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas. * Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas. Observaciones. * * *

II.

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En sospecha de difteria enviar porciones de membrana, una tórula faringea y una tórula nasofaringea. Especificar en la orden si se solicita cultivo de gonococo. Especificar si el paciente es portador de fibrosis quística.

Nasal Material Necesario. * Tórula fina de algodón con medio de transporte (Stuart o Amies) * Suero fisiológico estéril. Técnica. * Introducir suavemente una tórula fina +/-2cm en la nariz, en dirección paralela al piso nasal. * Girar suavemente contra la mucosa de la superficie nasal, extraer la tórula e introducirla inmediatamente al medio detransporte. Página 19

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III.

Transporte y Conservación.

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* Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas * Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas. Observaciones. Los cultivos de exudados nasales NO deben ser utilizados para el diagnóstico etiológico de la sinusitis.

Aspirado Sinusal -

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Material Necesario. * Tubo estéril sin aditivo (tapa roja) o frasco estéril. * Frasco de anaerobiosis (Portagerm/Port F) si se solicita cultivo de anaerobios. Técnica. * Aspiración. N° de muestras. * Volumen mínimo 1 ml. *

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*

-

En caso de solicitud de cultivo anaerobio transferir parte de la muestra al medio de transporte anaerobio (ver punto “c” cultivo de anaerobios).

Transporte y conservación. *

Muestra en frasco sin medio de transporte: Transporte a temperatur a ambiente inmediato (15 minutos) Muestras en medio de transporte anaerobio: Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas

Observaciones. *

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Si se utiliza tórula de algodón, humedecer en suero fisiológico estéril antes de introducir.

-

*

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Procedimiento médico. Página 20

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Material Necesario. * *

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* *

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Limpieza del oído externo con una tórula humedecida en suero fisiológico estéril. Obtener la muestra rotando la tórula en el conducto auditivo. Introducir la tórula inmediatamente al medio de transporte.

Transporte y Conservación. * *

-

Tórula fina de algodón con medio de transporte Stuart o Amies. Suero fisiologico estéril.

Técnica. *

Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas. Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.

Observaciones. *

Suele tratarse de muestras de mala calidad y en ningun caso resultan representativas de los microorganismos existentes en oído medio.

Secreción Otica (Timpanocentesis). -

Material Necesario. * *

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Secreción Otica (Conducto auditivo externo).

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Tubo estéril sin aditivo (tapa roja) o frasco estéril Tórula fina de algodón con medio de trnsporte Stuart o Amies, en caso que la membrana timpánica esté rota.

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Técnica.

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Aspiración con jeringa por punción timpánica. Recolectar el fluido con la tórula en caso de membrana timpánica rota.

Transporte y Conservación.

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* *

Muestra sin medio de transporte: Transporte a temperatura ambiente inmediato ( 15 minutos). Muestra en medio de transporte: Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas.

Observación.

-

*

Procedimiento médico.

2. Muestras del tracto respiratorio inferior. I.

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Expectoración. -

Material Necesario. * Frasco estéril hermético de boca ancha. * Suero fisiológico estéril y nebulizador.

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Técnica. * Enjuagar la boca con agua destilada estéril o solución salina (evitar uso de pasta de dientes o enjuagues bucales comerciales). * Obtener el esputo tras una expectoración profunda, preferentemente matinal. * Volumen: 2 a 10 ml. * De no producirse expectoración espontánea, puede inducirse el esputo con nebulizaciones de suero fisiológico estéril (15 ml

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MANUAL DE TOMA MUESTRAS

VERSION OO REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00

durante 10 minutos). Drenaje postural o kinesioterapia respiratoria. -

Transporte y Conservación. * *

-

Observaciones. * *

II.

No útil para anaerobios. El Laboratorio de Microbiología puede rechazar la muestra y solicitar una nueva si la calidad no es la adecuada ( de acuerdo a la evaluación por tinción de gram.)

Aspirado Traqueal cuantitativo -

Material Necesario. *

-

-

Según la norma de IIH.

Volumen. *

-

Frasco hermético estéril.

Técnica. *

Mínimo 2 ml.

Transporte y Conservación. * *

LABPRO

Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas. Conservación a 4°C hasta 24 horas.

Transporte a temperatura ambiente hasta 2 horas. Conservación a 4° C hasta 24 horas.

Página 23

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS -

III.

PAGINA 1 DE 00

Observaciones. * Sólo pacientes sometidos a ventilación mecánica (diagnóstico de Neumonía Asociada a Ventilación Mecánica).

Lavado broncoalveolar/ Cepillado bronquial. -

Material Necesario. *

-

Frasco hermético estéril.

Técnica. *

-

Broncoscopia.

Volumen. * *

-

Mínimo 2 ml Mínimo 5 ml si además de cultivo corriente se solicitan otros estudios (cultivo de hongos, Koch, estudio viral).

Transporte y Conservación. * *

-

Transporte a temperatura ambiente hasta 2 horas. Conservación a 4°C hasta 24 horas.

Observaciones. *

Procedimiento médico

3. Muestras Oculares. I.

Secreción o frotis conjuntival. -

Material Necesario. * *

LABPRO

Tórulas con medio de transporte Stuart o Amies. Suero salino estéril.

Página 24

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS -

Técnica. *

* *

-

*

Con una tórula humedecida en suero fisiológico estéril frotar sobre la conjuntiva tarsal inferior y el fornix (angulo interno). Introducir la torula inmediatamente en el medio de transporte

Transportar a temperatura ambiente hasta dos horas. No refrigerar. Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.

Raspado corneal.Material Necesario.*

-

-

Inoculación directa de las placas de cultivo.

Transporte y Conservación.* *

-

Placas de cultivo AS/ACH/ASab/koch/Caldo tioglicolato. Portaobjetos (2 – 4) Espátula estéril.

Técnica.*

LABPRO

Debe obtenerse la muestra antes de la instalación de los analgésico locales , colirios o antibióticos.

Transporte y Conservación. *

III.

PAGINA 1 DE 00

Transporte inmediato a temperatura ambiente. Las placas sembradas deben trasladarse al laboratorio de microbiología antes de 15 minutos. Observaciones.-

Página 25

MANUAL DE TOMA MUESTRAS * *

4.-

REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00

Procedimiento médico. Coordinación previa con laboratorio de microbiología.

Muestras de piel y Tejidos blandos. I.-

Ulceras – Quemaduras y Heridas superficiales. -

Material Necesario.* *

-

* * -

Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas. Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.

Observaciones.* *

II.-

Lavar cuidadosamente la superficie de la herida por arrastre mecánico, eliminar detritus y secreción superficial. Con la tórula frotar la parte más profunda, evitando el contacto con la piel adyacente. Introducir la tórula inmediatamente en el medio de transporte.

Transporte y Conservación.* *

-

Tórula de algodón con medio de transporte Stuart o Amies. Material para realizar aseo de la zona (suero fisiologico estéril o agua bidestilada estéril, compresas).

Técnica.*

Muestra en tórula no es apta para cultivo de anaerobios. En caso de solicitud de cultivo de anaerobios, la muestra debe ser tomada por el médico solicitante mediante aspiración con jeringa o por el envío de tejido en frasco estéril.

Vesículas – Estudio de celulitis o erisipela.-

LABPRO

VERSION OO

Material Necesario.Página 26

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS

-

* * *

Jeringa y aguja estéril. Tubo estérilsin aditivo (tapa roja) o frasco estéril. Tórula con medio de transporte Stuart o Amies en caso de vesículas ulceradas o costrosas.

* * *

Alcohol etílico o isopropilico al 70% Compresas esteriles. Guantes estériles y de procedimiento.

Técnica.*

*

* * -

-

Transporte a temperatura ambiente inmediato (15 minutos). Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.

Observaciones.* *

Procedimiento médico. Si se solicita estudio viral de la lesión (IF/PCR/Cultivo para VZV o HSV) transferir la muestra al medio de transporte viral y trasladar en forma inmediata a 4°C.

Abscesos cerrados.-

Material Necesario.* * * *

LABPRO

Realizar antisepsia de la piel con alcohol 70%; limpiar la zona con compresas estériles empapadas en aalcohol, del centro hacia la periferia. Abarcar una zona de +/-10 cm. Alrededor de la zona a puncionar. Aspirardirectamente con jeringa el contenido de las lesiones. Cuando no sea suficiente, instilar una pequeña cantidad de suero salino estéril y aspirarlo. Transferir la muestra a un tubo o frasco estéril. En caso de úlceras secundarias o costrosas, remover la secreción superficial y raspar con tórula la base de la lesión.

Transporte y Conservación.* *

III.-

PAGINA 1 DE 00

Jeringa de 5 o 10 ml y aguja estéril. Tubo estéril sin aditivo (tapa roja) o frasco estéril. Frascos de anaerobiosis (Portagerm/Port F) si se solicita cultivo de anaerobios. Material para realizar antisepsia de piel. Página 27

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS -

-

Técnica.*

Realizar antisepsia de piel con alcohol 70% y povidona yodada.

* * *

Puncionar y aspirar directamente el material con jeringa. Transferir la muestra a un tubo o frasco estéril. En caso de solicitud de cultivo anaerobio transferir parte de la muestra al medio de transporte anaerobio ( ver punto C; cultivo de anaerobios.).

Transporte y Conservación. * * *

-

PAGINA 1 DE 00

Muestra en frasco sin medio de transporte ; Transporte a Temperatura ambiente inmediato (15 minutos). Muestra en medio de transporte anaerobio: transporte a temperatura ambiente hasta dos horas. Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.

Observaciones.*

Procedimiento médico.

IV.- Quemaduras (Estudio cuantitativo). -

Material Necesario.*

-

Técnica.*

-

Utilizar técnica aséptica para obtener un trozo de tejido representativo e introducirlo inmediatamente al frasco estéril.

Transporte y Conservación.* *

LABPRO

Tubo estéril sin aditivo (tapa roja) o frascp estéril.

Transporte aa temperatura ambiente inmediato ( 15 min). Muestra en medio de transporte anaerobio : Transporte a Página 28

MANUAL DE TOMA MUESTRAS *

-

REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00

temperatura ambiente hasta dos horas. Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.

Observación. *

5.-

VERSION OO

Procedimiento médico.

Muestras de Líquidos estériles.I.-

Líquido Cefalorraquídeo.-

Material Necesario. * * * * *

-

Técnica.* * * *

*

-

realizar antisepsia de piel con alcohol 70% y povidona yodada Puncionar y aspirar directamente con jeringa según el procedimiento de punción lumbar. Transferir la muestra a un tubo estéril sin aditivo. En caso de solicitud de estudio viral (PCR/Cultivo) transferir parte de la muestra (mínimo 1ml) a un tubo hermético estéril sin aditivos para su traslado. En caso de solicitud de cultivo anaerobio transferir parte de la muestra al medio de transporte anaerobio (ver punto C: Cultivo de anaerobios.

Volumen.* *

LABPRO

Jeringa y aguja estéril. Tubo estéril sin aditivo (tapa roja). Frasco de anaerobiosis (Portagerm/Port F) si se solicita cultivo de anaerobios. Material para realizar antisepsia de piel. Guantes estériles.

Mínimo 1 ml. Si se solicitan otros estudios (anaerobios, viral, micobacterias, hongos), considerar 1 a2 ml por prueba. Página 29

MANUAL DE TOMA MUESTRAS -

PAGINA 1 DE 00

*

Transporte a temperatura ambiente inmediato (15 min.) no refrigerar. * El tubo para estudio viral debe transportarse a 4°C en forma inmediata.

-

Observaciones.Procedimiento médico.

Líquido articular (sinovial) – Líquido Pleural – Líquido Ascitico (peritoneal) Líquido Pericárdico. -

Material Necesario.* * * * *

-

*

-

Jeringa y aguja estéril. Tubo estéril sin aditivo (tapa roja) o frasco de Hemocultivo pediátrico BACT ALERT (tapa amarilla). Frasco de anaerobiosis (Portagerm/Port F) si se solicita cultivo de anaerobios. Material para realizar antisepsia de piel. Guantes estériles.

Técnica.* * *

Realizar antisepsia de piel con povidona yodada y alcohol Puncionar y aspirar directamente con jeringa. Transferir la muestra a un tubo estéril o a un frasco de hemocultivo (rotular el frasco, sacar la tapa plástica y desinfectar el tapón de goma del frasco de hemocultivo con alcohol 70% antes de realizar la antisepsia de piel). En caso de solicitud de cultivo anaerobio transferir parte de la muestra al medio de transporte anaerobio. (ver punto C: Cultivo de anaerobios.).

Volumen.* *

LABPRO

REVISION: 00/00/00

Transporte y Conservación.

*

II.-

VERSION OO

Mínimo 1 ml. Frasco de hemocultivo pediatrico: 0.5 a 4 ml Página 30

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS *

-

Si se solicitan otros estudios (anaerobios, viral, micobacterias, hongos) considerar 1 a 2 ml por prueba.

Transporte y Conservación.* * *

-

PAGINA 1 DE 00

Transporte a temperatura ambiente inmediato (15 min.). Muestra en frasco de hemocultivo o medio de transporte anaerobio: Transporte a temperatura ambiente hasta 2 h Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.

Observaciones.* *

Procedimiento médico. En líquido articular especificar si se solicita cultivo de Neisseria gonorrhoeae (gonococo)

. 6.-

Muestras de Tejido.I.-

Tejidos.-

Material Necesario.*

-

Técnica.*

-

*

LABPRO

Basta con un trozo de tejido (+/- 0.5 x 0.5 cm) para: Cultivo de anaerobios y cultivo de hongos. Un trozo distinto de tejido (+/- 0.5 x 0.5 cm) si se solicita estudio viral o estudio de micobacterias.

Transporte y Conservación.* *

-

Procedimiento médico.

Volumen.*

-

Frasco estéril sin aditivos.

Transporte a temperatura ambiente inmediato (15 min.). Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.

Observaciones.-

Página 31

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS *

7.-

Procedimiento médico.

Cultivo de Punta de Cateter Venoso Central.I.-

Punta de cateter.-

Material Necesario.* *

-

* -

Realizar antisepsia de piel con alcohol 70° y povidona. Remover el cateter en forma aséptica. Cortar 3 a 5 cm del extremo distal del catéter en forma aséptica, pinzando el extremo distal para proceder. Colocar la punta en el frasco estéril y cerrar inmediato.

Transporte y Conservación.*

-

Frasco estéril. Material para realizar antisepsia de piel.

Técnica.* * *

Transporte a temperatura ambiente inmediato (15 min.).

Observaciones.*

LABPRO

PAGINA 1 DE 00

No envíar a cultivo de rutina, sólo en sospecha de Infección asociada a CVC.

Página 32

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS d.-

PAGINA 1 DE 00

Cultivo Anaeróbico.1.-

Líquidos o fluidos.I.-

Líquidos o fluidos.-

Material Necesario.* * * *

-

Jeringa y ajuga estéril. Frasco de anaerobiosis (Portagerm/Port F) Alcohol 70° y algodón para desinfección del frasco. Material para realizar antisepsia de piel.

Técnica.*

Las muetras a las que se le solita cultivo anaerobico deben ser recolectadas por aspiración con aguja y jeringa estéril. Las muestras deben transferirse directamente al medio de transporte para anaerobios (Portagerm/Port F) Inmediatamente después de tomadas. Para esto, desinfectar el tapón del frasco con alcohol, puncionar el tapón con la aguja (No abrir el frasco) y depositar la muestra en el frasco.

*

*

-

Volumen.*

-

Mínimo 1 ml.

Transporte y Conservación.*

*

LABPRO

El Transporte de muestras en medio de transporte anaeróbico debe realizarse dentro de dos horas, a temperatura ambiente, protegido de la luz Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.

Página 33

MANUAL DE TOMA MUESTRAS -

REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00

Observaciones.* * *

2.-

VERSION OO

Procedimiento médico. El medio de transporte (Portagerm/Port F) debe almacenarse a temperatura ambiente, protegido de la luz. No deben utilizarse los frascos que presenten coloración azul-lavanda del agar (medio).

Tejidos.I.-

Tejidos.-

Material Necesario.*

-

Técnica.*

-

Basta con un trozo de tejido (+/- 0.5 x 0.5 cm).

Transporte y Conservación.* *

-

Las muestras de tejido o biopsiaspueden ser enviadas en frasco estéril hermético sin aditivos, ya que el tejido proteje la anaerobiosis.

Volumen.*

-

Frasco estéril hermético.

Transporte inmediato a temperatura ambiente (máx 2hr) Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.

Observaciones.*

Procedimiento médico.

NO son útiles para el cultivo de anaeróbios: muestras tomadas en tórula, muestras de orina (excepto la punción suprapúbica), muestras de deposición (excepto búsqueda de C. difficile), secreción faríngea o nasofaringea, secreción uretral, secreción vaginal o endocervical, loquios, exudados superficiales.

LABPRO

Página 34

MANUAL DE TOMA MUESTRAS e.-

VERSION OO REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00

Urocultivo 1.-

Orina de segundo chorro.I.-

Orina de segundo chorro.-

Material Necesario.* *

-

Técnica.* Explicar al paciente el procedimiento y entregar instructivo correspondiente. * Realizar el aseo genital según lo descrito en el Capítulo “Obtención de Muestras de orina”.

-

Volumen.*

-

* -

2 a 5 ml.

Transporte y Conservación.*

Debe trasladarse en forma inmediata al laboratorio (antes de dos horas) a temperatura ambiente o a 4°C. Puede mantenerse refrigerada (4°C) hasta 24 horas.

Observaciones. * *

LABPRO

Frasco estéril de boca ancha. Material para aseo genital: Tórulas o gasas estériles,riñon estéril, agua, jabón neutro, guantes de procedimiento.

Idealmente usar primera micción de la mañana. Si esto no es posible, realizar la toma de muestra despue s de tres horas de retención.

Página 35

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS 2.-

PAGINA 1 DE 00

Orina por recolector.I.-

Orina por recolector.-

Material Necesario.* * *

-

Recolector.Frasco estéril de boca ancha.Material para aseo genital: Tórulas o gasas estériles, riñon estéril, agua, jabón neutro, guantes de proced. Técnica.*

* * -

Volumen.*

-

Registrar el tipo de muestra (orina por recolector).

Orina por cateterismo vesical.-

Material Necesario.* * *

LABPRO

Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas. Conservación a 4°C hasta 24 horas.

Observaciones.*

II.-

1 a 5 ml.

Transporte y Conservación.* *

-

Realizar el aseo genital, según lo descrito en el capítulo “Obtención de Muestras de orina. No mantener el recolector más de 30 minutos. Traspasar al frasco estéril y cerrar inmediatamente.

Frasco estéril de boca ancha. Sonda Nelaton estéril. Guantes estériles.

Página 36

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS *

-

Material para aseo genital: tórulas o gasas estériles, riñón estéril, agua, jabón neutro, guantes de procedimiento.

Técnica.* *

* -

-

*

Transporte a temperatura ambiente hasta 2 horas.

*

Conservaciön a 4°C hasta 24 horas.

Observaciones.Registrar el tipo de muestra. (orina por cateterismo vesical.)

Orina por punción de catéter urinario permanente.-

Material Necesario.* * *

LABPRO

2 a 5 ml.

Transporte y Conservación.-

*

III.-

Realizar aseo genital según lo descrito en el capítulo “Obtención de Muestras de orina”. Con guantes estériles, separando labios menores en la mujer con una gasa estéril, introducir la sonda en forma aseptica hasta que comienze a fluir la orina. Recolectar la orina en frasco estéril.

Volumen.*

-

PAGINA 1 DE 00

Frasco estéril de boca ancha. Jeringa y aguja estéril. Alcohol 70°.

Página 37

MANUAL DE TOMA MUESTRAS -

Volumen.*

*

Registrar el tipo de muestra (orina por punción de CUP). En pacientes portadores de CUP, idealmente cambiar la sonda para tomar urocultivo, sólo puncionar cuando esto no sea posible. No debe tomarse cultivos de rutina en pacientes portadores de CUP (sólo ante sospecha de infección del tracto urinario).

Orina por punción suprapúbica.-

Material Necesario.* * *

-

Frasco estéril de boca ancha. Jeringa y aguja estéril. Material para realizar antisepsia de piel: alcohol etílico o isopropílico al 70%, povidona yodada, compresas estériles.

Técnica.*

LABPRO

Transporte a temperatura aambiente hasta dos horas. Conservación a 4°C hasta 24 horas.

Observaciones.* *

IV.-

2 a 5 ml.

Transporte y Conservación.* *

-

PAGINA 1 DE 00

Desinfectar el sitio de punción del segmento proximal del cateter con alcohol 70° Aspirar con jeringa estéril entre 2 a 5 ml de orina, vaciar inmediatamente al frasco estéril.

*

-

REVISION: 00/00/00

Técnica.*

-

VERSION OO

Punción y aspiración con técnica aséptica

Página 38

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS -

Volumen.*

-

2 a 5 ml

Transporte y Conservación.* *

-

PAGINA 1 DE 00

Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas. Puede mantenerse refrigerada (4°C) hasta 24 horas.

Observaciones.* * *

Procedimiento médico. Registrar el tipo de muestra (orina por punción vesical). Técnica de elección si se solicita cultivo anaeróbico de orina.

DETERMINACION DE VOLUMEN NECESARIO

Urocultivo.

- Transporte en frasco estéril hermético a 4°C - Almacenar máximo 24 horas a 4°C Cultivo de anaerobios 2 a 5 ml - Sólo por punción suprapúbica. - Transportar en medio de transporte anaeróbico a temperatura ambiente. Cultivo de hongos Mínimo 20 ml - Primera micción de la mañana (no enviar orina de 24 horas. - Transporte de inmediato al laboratorio.- Almacenar a 4°C máximo 4 horas.Cultivo de 40 ml - Primera micción de la mañana por tres días Micobacterias (mínimo 20 ml) consecutivos (no orina de 24 horas). - Transportar en frasco estéril oscuro o protegido de la luz. - Transporte de inmediato al laboratorio. - Almacenar a 4°C máximo 2 horas.

LABPRO

2 a 5 ml

Página 39

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS f.-

PAGINA 1 DE 00

Coprocultivo.1.-

Coprocultivo.I.-

Coprocultivo.-

Material Necesario.*

-

Tórula de algodón con medio de transporte Cary-Blair

Técnica.*

-

Obtener deposición recién emitida con la tórula, seleccionando la zona más alterada de la deposición (mucus, pus, sangre) e introducirla inmediatamente al medio de transporte.

Volumen.*

-

Una tórula por paciente.-

Transporte y Conservación.* *

-

Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas. Conservación a 4°C hasta 48 horas.-

Observaciones.*

II.-

No enviar muestras en medio de transporte Stuart o Amies.

Torulado rectal.-

Material Necesario.*

-

Tórula de algodón con medio de transporte Cary-Blair.

Técnica.*

Introducir la tórula por el esfinter anal alrededor de tres cm. rotar suavemente y retirar.

LABPRO

Página 40

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS * -

Transporte a temperatura ambiente hasta 2 horas. Conservación a 4°C hasta 48 horas.

Observaciones.*

2.-

No enviar muestra en medio de transp. Stuart o Amies.

Detección de Toxina de Clostridium difficile. I.-

Detección de Toxina AB de Clostridium difficile. -

Material Necesario.*

-

Frasco estéril de boca ancha.

Técnica.*

-

Recolectar deposición recién emitida en el frasco estéril.

Volumen.*

-

5 a 10 ml de deposición.-

Transporte y Conservación.*

-

Debe trasladarse en forma inmediata al laboratorio (antes de dos horas) a temperatura ambiente.

Observaciones.* *

LABPRO

Introducir la tórula inmediatamente en el medio de transporte Cary-Blair.

Transporte y Conservación.* *

-

PAGINA 1 DE 00

Enviar muestra fresca, sin medio de transporte. Si además se solicita coprocultivo, tomar otra muestra para enviar en medio transporte Cary-Blair.

Página 41

MANUAL DE TOMA MUESTRAS 3.-

VERSION OO REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00

Detección de Rotavirus.Seguir la misma técnica que para la detección de Toxina de Clostridium difficile.

4.-

Detección de Leucocitos fecales.Seguir la misma técnica que para la detección de Toxina de Clostridium difficile.

g.-

Hemocultivo.1.-

Antisepsia de piel.I.-

Procedimiento para realizar antisepsia de piel.-

Material necesario.* * * *

-

Alcohol etílico o isopropílico al 70% Povidona yodada. Compresas estériles. Guantes estériles y de procedimiento.

Técnica.*

*

* *

LABPRO

Con guantes de procedimiento, limpiar la zona con alcohol, del centro hacia la periferia. Abarcar una zona de +/- 10 cm, alrededor de la zona a puncionar. Repetir la operación con povidona yodada. En pacientes con hipersensibilidad al yodo, utilizar alcohol dos veces consecutivas en lugar de povidona. Dejar secar por dos minutos para que la povidona ejerza su acción antiséptica. Solamente tocar la zona con guantes estériles después de realizada la antisepsia.

Página 42

MANUAL DE TOMA MUESTRAS II.-

REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00

Hemocultivos peiféricos.-

Objetivo.*

-

Diagnóstico etiológico de bacteriemias.-

Material Necesario.* *

Jeringa y aguja estéril. Frasco de hemocultivo BACT ALERT: Adulto con resina (tapa verde). Pediátrico con resina (tapa amarilla). Material para antsepsia de piel. Algodón para la desinfección del tapón de los frascos.

* * -

Técnica.* * * * * * *

-

Rotular los frascos con el nombre del paciente, N° de petición, fecha y hora de la toma del hemocultivo. Retirar la tapa plástica y desinfectar el tapón de goma del frasco con un algodón impregnado en alcohol 70°. Realizar la antisepsia de la piel. Con guantes estériles, puncionar la vena con jeringa en forma aséptica y extraer el volumen de sangre deseado. Inocular la botella de hemocultivo sin cambiar la aguja. Marcar si corresponde al primer, segundo o tercer frasco (I – II –III). No debe utilizarse la misma punción para inocular más de una botella. Cada hemocultivo debe realizarse en un sitio de punción diferente, idealmente separados por 30 a 90 minutos.

Volumen.* *

LABPRO

VERSION OO

Adultos: 10 ml de sangre por frasco. Niños 2 a 5 ml de sangre por frasco. Mínimo 0.5 ml por frasco (neonatos).

Página 43

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS -

Transporte y Conservación.*

-

*

*

Se recomienda un mínimo de dos botellas por paciente. Se recomienda tres botellas (de tres sitios de punción diferente) en caso de sospecha de endocarditis y repetir la serie si los hemocultivos son negativos a las 24 horas. Cada botella debe ser tomada de una punción venosa diferente (no inocular más de una botella con la misma aguja ni punción). Cada punción debe estar distanciada de la siguiente por 30 a 90 minutos (en caso de pacientes graves, pueden obtenese las muestras en forma simultánea, siempre que se realicen las punciones de sitios diferentes). No escribir sobre el código de barra de la botella.

Hemocultivos con tiempo diferencial.-

Material Necesario.* * * *

-

jeringa y aguja estéril. Frasco de hemocultivo BACT ALERT : Adulto con resina (tapa verde). Pediátrico con resina (tapa amarilla). Material para antisepsia de piel. Algodón para la desinfección del tapón de los frascos.

Técnica.* * *

LABPRO

Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas.

Observaciones.* *

III.-

PAGINA 1 DE 00

Lavado clínico de manos. Realizar antisepsia de piel alrededor del catéter. Con guantes estériles, extraer un ml de sangre por el catéter central y eliminar. Luego extraer 10 ml (adulto) o 1 a 5 ml (niños) a través del catéter e inocular una botella de hemocultivo (adulto o pediátrico según corresponda). Página 44

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS * *

-

Realizar antisepsia de piel para hemocultivo peiferico. Obtener dos hemocultivos periféricos de sitios de punción diferentes.

Transporte y Conservación.* -

Transporte a temperatura ambiente hasta 2 horas

Observación.* *

*

*

h.-

Desinfectar el tapón de los frascos con alcohol 70° antes de inocular. Rotular los frascos con el nombre del paciente, fecha y hora de la toma del hemocultivo. Marcar en la botella si corresponde al hemocultivo central (si se toma mas de un cultivo central, especificar que cateter) o periférico (I o II). Cada botella debe ser tomada de una punción venosa diferente (no inocular mas de una botella con la misma aguja ni punción) No escribir sobre el código de barra de la botella.

Detección de virus respiratorios o BORDETELLA PERTUSSIS. -

Aspirado Nasofaringeo.-

Material Necesario.* * * * * *

LABPRO

PAGINA 1 DE 00

Red de aspiración central. Sonda de aspiración estéril Tubo para aspiración de secreciones. Medio de transporte viral (mantener refrigerado). Guantes estériles. Mascarilla desechable y antiparras.

Página 45

MANUAL DE TOMA MUESTRAS -

* *

Lavado clínico de manos. Con guantes estériles, introducir cuidadosamente la onda de aspiración por una fosa nasal hacia la nasofaringe. Sólo al llegar a la nasofaringe aspirar las secreciones. Retirar la sonda. Transferir la muestra al medio de transporte viral. Rotular el tubo de transporte.

Transporte a 4°C hasta 2 horas. Conservación a 4°C hasta 24 horas.

Observaciones. * * * * *

LABPRO

PAGINA 1 DE 00

Transporte y Conservación.* *

-

REVISION: 00/00/00

Técnica.* *

-

VERSION OO

El procedimiento debe ser realizado por enfermera (o) y debe contar con un ayudante. Explicar al paciente o su familiar el procedimiento para obtener cooperación. La introducción de la sonda provoca tos en forma refleja. Se requiere ayuno para obtener una buena toma de muestra. Evitar enviar muestras de saliva o muestras sanguinolentas, para obtener un adecuado número de células epiteliales.

Página 46

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS -

Torulado o hisopado retrofaríngeo.-

Material Necesario.* * * *

-

*

* * *

-

Lavado clínico de manos. Colocar la cabeza del paciente inclinada hacia atrás en un angulo de 70°.Con guantes de procedimiento, introducir el hisopo en la fosa nasal. Deslizar el hisopo por la mucosa del piso de la fosa nasal (nunca con dirección hacia arriba) hasta tocar la pared posterior de la faringe. Frotar y girar el hisopo en la faringe, para obtener células epiteliales. Retirar el hisopo y repetir el procedimiento en la otra fosa nasal. Introducir el hisopo en medio de transporte. Rotular el tubo de transporte.

Transporte y Conservación.* *

-

Hisopo de dracón o rayón con base plástica o de alambre flexible (no madera) con medio de transporte viral. Medio de transporte viral (mantener refrigerado) Guantes de procedimiento. Mascarilla desechable.

Técnica.* *

Transporte a 4°C hasta 2 horas. Conservación a 4°C hasta 24 horas.

Observaciones.* *

LABPRO

PAGINA 1 DE 00

Método de elección en pacientes adultos. Explicar al paciente el procedimiento para obtener cooperación Página 47

MANUAL DE TOMA MUESTRAS * i.-

REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00

Evitar tórulas de algodón y de alginato.

Tracto Genital Femenino.-

Flujo Vaginal.-

Material Necesario.* * * * * *

-

*

* * *

-

Camilla ginecológica. Espéculo estéril. Tórula estéril de alginato cálcico o dracón con medio de transporte Stuart o Amies (cultivo corriente). Dos tórulas sin medio de transporte para realizar extendido y examen directo. Tubo con dos ml de suero fisiológico estéril (examen directo). Lámina portaobjeto.

Técnica.*

Con la paciente en posición ginecológica introducir el espéculo sin lubricante (si es necesario para lubricar utilizar agua tibia). Recoger bajo visión directa la muestra con una tórula, de la zona con mayor exudado, o en su defecto, del fondo del saco vaginal posterior. Introducir la tórula en el medio de transporte (cultivo). Repetir la operación con una segunda tórula para realizar el extendido en portaobjeto (examen microscópico). Utilizar una tercera tórula para introducir en suero fisiológico (examen directo).

N° de muestras.* *

LABPRO

VERSION OO

Solicitud de cultivo corriente: obtener dos tórulas, una destinada al estudio microscópico y otra al cultivo. Solicitud de estudio de flujo vaginal: obtener las tres tórulas descritas. Página 48

MANUAL DE TOMA MUESTRAS -

*

*

Transporte inmediato a temperatura ambiente o conservar hasta dos horas a 37°C (tórula en suero fisiológico). No refrigerar. Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas (tórula en medio de transporte y frotis en portaobjeto). No refrigerar.

Ante sospecha de infección por Chlamydia trachomatis, Mycoplasma hominis o Ureaplasma urealtycum, enviar muestra endocervical. No deben utilizarse en los días previos a la toma de muestra, soluciones antisépticas vaginales, óvulos ni pomadas. En paciente embarazadas la toma de muestra es un procedimiento médico.

Secreción Endocervical.-

Material Necesario.* * * * * *

LABPRO

PAGINA 1 DE 00

Observaciones.*

-

REVISION: 00/00/00

Transporte y Conservación.*

-

VERSION OO

Camilla ginecológica. Espéculo estéril. Tórulas sin medio de transporte para limpieza de exocérvix. Tórula estéril de alginato cálcico o dracón con medio de transporte Stuart o Amies (cultivo corriente). Lámina portaobjeto y tórula sin medio de transporte para realizar extendido. Para estudio de Mycoplasma/Ureaplasma se requiere de tórula y medio de transporte especifico (frasco de tapa rosca blanca rotulado como R1).

Página 49

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS *

-

* *

* *

Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas. Conservación hasta 24 horas a temperatura ambiente.

Observaciones.* *

LABPRO

Solicitud de cultivo corriente: obtener dos tórulas, una destinada al estudio microscópico y otra al cultivo. Solicitud de Mycoplasma: obtener una tórula adicional e inocular en el medio de transporte específico. Solicitud de Chlamydia: obtener una tórula de alginato cálcico adicional y enviar sin medio de transporte.

Transporte y Conservación.* *

-

Con la paciente en posición ginecológica introducir el espéculo sin lubricante (si es necesario para lubricar utilizar agua tibia). Bajo visión directa, limpiar el exocervix de secreciones vaginales con una tórula seca. Introducir una tórula en el canal endocervical con un suave movimiento de rotación. Repetir la operación para obtener el número de muestras adecuado según los exámenes solicitados.

N° de muestras.*

-

Para estudio de Chlamydia se requiere tórula de Alginato cálcico sin medio de transporte.

Técnica.*

-

PAGINA 1 DE 00

Debe evitarse el uso de tórulas de algodón. No deben utilizarse en los días previos a la toma de muestras, soluciones antisépticas vaginales, óvulos ni pomadas. Página 50

MANUAL DE TOMA MUESTRAS

-

PAGINA 1 DE 00

Material Necesario.* *

-

-

Amniocentesis.

Transporte y Conservación.* * *

-

Tubo estéril sin aditivo o frasco hermético estéril. Frasco de anaerobiosis (Portagerm/Port F) si se solicita cultivo anaeróbico.

Técnica.*

Transporte a temperatura ambiente inmediato (15 minutos) Muestra en medio de transporte anaerobio: Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas. Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.

Observaciones.*

Procedimiento médico. Sólo indicación por especialidad.

Tracto Genital Masculino.-

Secreción uretral.-

LABPRO

REVISION: 00/00/00

Líquido amniótico. -

j.-

VERSION OO

Material Necesario.-

Página 51

MANUAL DE TOMA MUESTRAS * *

*

-

* *

* *

LABPRO

Tórula fina estéril de alginato cálcico o dracon con medio de transporte Stuart o Amies (cultivo corriente). Para estudio de Mycoplasma/Ureaplasma se requiere de tórula y medio de transporte especifico (frasco de tapa rosca blanca rotulado como R1). Para estudio ed Chlamydia se requiere tórula de Alginato cálcico sin medio de transporte.

En caso de exudado franco, recoger el exudado con la(s) tórulas (s) correspondiente según los exámenes solicitados. El exudado puede estimularse exprimiendo la uretra. Si no se observa exudado introducir suavemente una tórula con movimiento rotatorio +/- 2 cm dentro de la uretra (3 a 5 cm para busqueda de Chlamydia). Repetir la operación para obtener el número de muestras adecuado según los examenes solicitados.

Solicitud de cultico corriente: obtener dos tórulas, una destinada al estudio microscópico y otra al cultivo. Solicitud de Mycoplasma: obtener una tórula adicional e inocular en el medio de transporte específico. Solicitu de Chlamydias: obtener una tórula de alginato cálcico adicional y enviar sin medio de transporte.

Transporte y Conservación.* *

-

PAGINA 1 DE 00

N° de muestras.*

-

REVISION: 00/00/00

Técnica.*

-

VERSION OO

Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas. Conservación hasta 24 horas a temperatura ambiente.

Observaciones.Página 52

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS * *

k.-

Debe evitarse el uso de tórulas de algodón. Obtener la muestra preferentemente antes de la primera micción de la mañana. Si esto no es posible, esperar por lo menos una hora desde la última micción.

Baciloscopia y Cultivo de Koch.-

Expectoración.-

Material Necesario.*

-

* * *

-

Enjuagar la boca con agua destilada estéril o solución salina (evitar el uso de pasta de dientes o enjuagues bucales comerciales). Obtener el esputotras una espectoración profunda, preferentemente matinal. Volumen : 2 a 10 ml. De no producirse expectoración espontánea, puede inducirse el esputo con nebulizaciones de suero fisiológico estéril (15 ml durante 10 minutos). Drenaje postural o kinesioterapia respiratoria.

Volumen.*

-

Frasco hermético estéril oscuro

Técnica.*

2 a 5 ml en frasco o tubo estéril protegido de la luz.

Transporte y Conservación.*

LABPRO

PAGINA 1 DE 00

Debe trasladarse a temperatura ambiente, protegido de la luz, en forma inmediata al laboratorio, para su adecuado procesamiento. Página 53

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS * -

*

La recolección de muestra debe realizarse a primera hora de la mañana, antes que el paciente ingiera alimentos.Evitar muestras de salivas.

Muestras gastricas.-

Material Necesario.* * *

-

* * -

Introducir la sonda nasogástricaoralmente hasta el estómago. Lavarvcon 25 – 50 ml de suero fisiológico. Aspirar la muestra y transferir a un frasco estéril.

Volumen.* *

-

Sonda nasogástrica. Suero fisiológico estéril. Frasco hermético estéril.

Técnica.*

3 a 5 ml Si se solicita baciloscopía, enviar 5 ml en frasco o tubo estéril protegido de la luz.

Transporte y Conservación.*

* LABPRO

Refrigerar a 4°C hasta 4 horas.

Observaciones.*

-

PAGINA 1 DE 00

Debe trasladarse a temperatura ambiente, protegido de la luz, en forma inmediata al laboratorio, idealmente en menos de 15 minutos, para su adecuado procesamiento. Refrigerar a 4°C hasta 4 horas. Página 54

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS -

Observaciones.* *

l.-

Procedimiento médico.La recolección de muestras debe realizarse a primera hora de la mañana antes que el paciente ingiera alimentos.

Muestras de Vigilancia.-

Detección de Enterococo resistente a Vancomicina (ERV).-

Material Necesario.*

-

*

-

Una tórula por paciente.-

Transporte y Conservación.*

-

Introducir la tórula en el esfínter anal, rotar suavemente y retirar. Introducir la tórula inmediatamente en el medio de transporte.

Volumen.*

-

Tórula en medio de transporte Stuart.-

Técnica.*

LABPRO

PAGINA 1 DE 00

Mantener a temperatura ambiente hasta 4 horas.-

Observaciones.-

Página 55

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS * *

-

La busqueda de ERV se realiza con la periocidad que determina el comité de IIH. El transporte se realiza en medio Stuart ( a diferencia del coprocultivo).

Detección de portación nasal de Staphylococcus aureus. -

Material Necesario.*

-

* *

-

Basta con una tórula.

Transporte y Conservación.*

-

Introducir suavemente una tórula fina +/- 2 cm en la nariz, en dirección paralela al piso nasal.Girar suavemente contra la mucosa de la superficie nasal y extraer. Si se utiliza tórula de algodón, humedecer en suero fisiológico estéril antes de introducir

N° de muestras.*

-

Tórula fina de algodón con medio de transporte (Stuart o Amies).

Técnica.*

Mantener a temperatura ambiente hasta 4 horas.-

Observaciones.*

LABPRO

PAGINA 1 DE 00

Los cultivos de exudados nasales NO deben ser utilizados para el diagnóstico etiológico de la sinusitis.

Página 56

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS m.-

Cultivo de Hongos.-

Micosis Superficiales Cutáneas.-

Material Necesario.* * *

-

-

Transporte a temperatura ambiente hasta 24 horas.-

Observaciones.* * * *

-

Desinfección de la zona con alcohol 70° Raspar suavemente la lesión con bisturí o cucharilla esterilizada y depositar la muestra en una placa petri estéril, o entre dos portaobjetos limpios.

Transporte y Conservación.*

-

Bisturí o cucharilla estéril.Portaobjeto o placa petri estéril. Alcohol 70° y algodón para desinfección de piel.

Técnica.* *

Muestra debe ser tomada por personal entrenado. Evitar sangramiento durante el raspado. Evitar perdida de la muestra durante el transporte (sellar las placas o envolver los portaobjetos en papel.). Pacientes que utilicen cremas antifúngicas tópicas debe esperar 3 a 5 días antes de tomar la muestra.

Micosis Superficiales Ungueales.-

Material Necesario.* * *

LABPRO

PAGINA 1 DE 00

Bisturí o cucharilla estéril. Portaobjeto o placa de petri estéril. Alcohol 70° y alcohol para desinfección de la piel. Página 57

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS -

Técnica.* * *

-

*

Material Necesario.* *

Pinzas. Portaobjeto o placa de petri estéril.

Técnica.* *

LABPRO

Muestra debe seer tomada por personal entrenado. Remover esmalte antes de la toma de muestra. Evitar sangramiento durante el raspado Evitar pedida de la muestradurante el transporte (sellar las placas o envolver los portaobjetos en papel). Pacientes que utilicen cremas antifúngicas tópicas debe esperar 3 a 5 días antes de tomar la muestra.

Micosis Superficial de Pelo.-

-

Transporte a temperatura ambiente hasta 24 horas.-

Observaciones.* * * *

-

Desinfección de la zona con alcohol de 70° Cortar con tijera estéril un trozo de uña comprometida. Raspar profundamente con cicharilla estéril el lecho ungueal (debajo de la uña) y depositar la muestra en una placa de petri estéril, entre dos portaobjetos limpios.

Transporte y Conservación.*

-

PAGINA 1 DE 00

Tomar con las pinzas 10 a 12 pelos afectados, con raíces y puntas intactas. Depositar la muestra en tubo o frasco estéril.

Página 58

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS -

Transporte y Conservación.*

-

Muestra debe ser tomada por personal entrenado. Evitar perdida de la muestra durante el transporte. Paciente que utilice cremas antifúngicas tópicas debe esperar 3 a 5 días antes de tomar la muestra.

Screening Streptococcus Grupo B -

Isopado Perineo-rectal. -

Material Necesario.

-

* Tórula sin medio de cultivo * Tubo con medio LIM Técnica. * *

-

-

Realizar un isopado desde el inicio del perineo hasta el inicio del recto. Depositar la muestra en tubo con LIM

Transporte y Conservación. *

Transporte a temperatura ambiente hasta 4 horas.

Observaciones. *

LABPRO

Transporte a temperatura ambiente hasta 24 horas.

Observaciones.* * *

n.-

PAGINA 1 DE 00

Muestra debe ser tomada por personal entrenado.

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MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS IV.-

EXAMENES DE HEMATOLOGIA Y COAGULACION.-

A.-

EOSINOFILOS BRONQUIALES.-

PAGINA 1 DE 00

Para la toma de esta muestra, se solicitará al paciente tener al menos 4 horas de ayuno. Proceder de la misma forma como se toma muestra para Baciloscopía y enviar muestra al laboratorio. B:_

EOSINOFILOS NASALES.-

Esta muestra se debe obtener de preferencia en la mañana y cuando la secreción nasal es mas abundante. El paciente debe estar sentado en posición cómoda. Hacer que el paciente se suene, eliminando la secreción más superficial. Indicar al paciente que se apriete una fosa nasal y pedirle que soplepor la fosa nasal libre lo más fuerte que le sea posible. Dejar que la mucosidad eliminada toque el portaobjeto y con la tórula de madera extenderlo suavemente, girando la tórula. En caso de que la secreción sea más abundante y espesa, usar otro portaobjeto para extenderla. Marcar el portaobjeto con marcador indeleble y enviar muestra al laboratorio. C.-

HEMOGRAMA – VHS

Tomar tubo lila (EDTA) y realizar frotis sanguíneo. Si incluye recuento de plaquetas agregar tubo celeste. D.-

TIEMPO DE SANGRIA (IVY)

Exponer el antebrazo del paciente y escoger una zona libre de vénulas, hematomas,heridas y otros. Limpie la zona escogida. Coloque el esfingomanómetro en el brazo del paciente y regúlelo a 40 mm hg. Se extrae el aparato de Ivy de su reservorio estéril y se quita el seguro. Se presiona el disparador al mismo tiempo que el cronómetro, un segundo después, retire el dispositivo. Cada 30 segundos secar con papel filtro, no tocar los bordes de la incisión para no interferir con el tapón plaquetario. Se anota el tiempo que tarda en cesar la hemorragia

LABPRO

Página 60

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS E.-

PAGINA 1 DE 00

TIEMPO DE COAGULACION.

Se observa la formación del coágulo, en condiciones estandarizadas; esta prueba mide el mecanismo intrínsico de la coagulación. Active el cronometro al momento de obtener la muestra. Coloque la muestra (tubo tapa roja) en un baño termoregulado a 37°C. Realice la revisión visual del tubo cada 30 segundos hasta que se aprecie la formación de un coagulo. En ese momento, detenga el cronometro y registre el tiempo obtenido.

LABPRO

Página 61

MANUAL DE TOMA MUESTRAS V.-

VERSION OO REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00

EXAMENES BIOQUIMICA Y HORMONAS.

Examen

Acido úrico Albúmina Bilirrubina total Bilirrubina conjugada Calcio Calcio iónico Creatinina Colesterol total Colesterol HDL CK total CK MB Fosfatasa alcalina Fósforo GGT GPT GOT LDH Nitrógeno ureico Proteína C reactiva RPR VDRL Triglicéridos Grupo ABO-Rh

LABPRO

Preparación del paciente

Ayuno

En caso de estudio de lipidos, se requiere un ayuno min. 12 horas.

Tubo

Tubo tapa roja

Volumen mínimo

3 ml (para todos o cada uno)

Observaciones

Evitar la hemólisis

En caso de bilirrubinas proteger la muestra de la luz

Página 62

MANUAL DE TOMA MUESTRAS

VERSION OO REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00

Glicemia Test de tolerancia a glucosa

Ayuno 8 hrs mínimo.

Tubo tapa gris

Según marca del tubo

Identificación clara del orden de las muestras.

Hemoglobina glicosilada (A1C)

No requiere ayuno.

Tapa lila con EDTA

Según marca del tubo

Mezcla suave con el antico agulante.

Proteinuria Gluosuria Microalbuminuria NU urinario Calciuria Catecolaminas urinarias.-

Evitar ejercicio brusco durante la recolección de la muestra.

Injesta normal Parasitologico seriado de líquidos. de deposiciones.

LABPRO

Botellas de 1 ó 2 lt.

Frasco tapa boca ancha

Toda la orina recolectada.

Usar botellas muy limpias y secas. Reco Lectar TODA las miccione

30 ml Si apareciera gusano, transportar en frasco con agua de de llave.

Página 63

MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS

Hemorragia Oculta

Troponina I

Regimen 3 días Frasco boca Tamaño de previos, sin carnes ancha (sin una nuez rojas ni colorantes preservantes) rojos.

Tubo tapa

PAGINA 1 DE 00

Inmunológico no requiere dieta

Urgente

verde Carboxihemoglobina Metahemoglobina Gases en sangre

LABPRO

Jeringa hepa rina

Cadena de frío

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MANUAL DE TOMA MUESTRAS VI.-

VERSION OO REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00

DETECCION DROGAS DE ABUSO A. Drogas de abuso en orina. La muestra se obtendra en presencia de un veedor del laboratorio, quién verificará que la muestra sea proporcionada por el paciente, salvaguardando la confidencialidad del proceso y evitando importunar al paciente, pero manteniendo en todo momento la supervisión de la toma de muestra. El paciente debe llenar el consentimiento informado y la mustra es cerrada en su presencia y enviada al laboratorio para su análisis. La obtención de la muestra se realiza de la misma manera que para el examen de orina completa. Se puede detectar cocaína, marihuana, anfetaminas, opiáceos, fenilciclidina, antidresivos triciclicos, metadona y barbitúricos. Frente a otros analitos consultar directamente al laboratorio. La busqueda de drogas de abuso en orina es un examen de screening, no confirmatorio. B. Drogas de abuso en pelo. La muestra se obtiene de preferencia de la zona occipital, en una cantidad no inferior a los 200 mcg, (esto corresponde aproximadamente al ancho de un lápiz grafito). La muestra debe ser almacenada en el set entregado para este efecto por el Laboratorio Central. Se determina preferentemente cocaína, pero eventualmente frente a requerimientos específicos, se puede detectar marihuana y anfetaminas. Es un examen confirmatorio. C. Papanicolau. Se le pide al paciente acostarse sobre la espalda con los pies en los estribos de la camilla ginecológica. Se introduce un espéculo (instrumento utilizado para dilatar las paredes del canal vaginal con el fin de examinar el interior) en la vagina y se abre suavemente. Se toma una muetra de células del exterior y del canal del cuello uterino frotando suavemente el exterior del cérvix con la espátula e insertando posteriormente el cepillo. Ambos utensilios viene incluidos en el kit. La muestra se coloca sobre el portaobjeto incluido y se rocía con el citofijador. Transporte a temperatura ambiente. Puede haber un poco de molestia y una sensación de presión durante el examen; además, puede presentarse una pequeña cantidad de sangrado después de éste.

LABPRO

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MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS

PAGINA 1 DE 00

Cuadro resumen de contenedores de exámenes.-

TUBO TAPA ROJA

SIN ADITIVO

TUBO TAPA AMARILLA

DETERMINACIONES SERICAS DEBE AGREGARSE TUBO - Perfil Bioquímico Gris para glicemia si la - Perfil Hepático muestra no se procesará - Perfil Lipídico antes de dos horas en el - Creatinina laboratorio. - Marcadores virales - Marcadores tumorales Incluir tubo tapa celeste - Estudio anticuerpos para protrombina. - Grupo Sanguíneo

TUBO TAPA Fluoruro Na GRIS (agente anti glicolítico)

- Indicado especialmente para tomar glicemias aisladas o como parte de perfil bioquímico.

Minimiza variaciones en la glucosa sérica inhibiendo el consumo de glucosa Por parte de glóbulos rojos contenidos en la muestra.

TUBO TAPA LILA

- Hemograma completo o recuentos celulares par ciales. - Hemoglobina glicosilada - Recuento de reticulocitos - Amonio.

La muestra debe tomarse sólo hasta el nivel indicado en el tubo.

TUBO TAPA VERDE

LABPRO

EDTA

Heparina Li

- Troponina I - Células de Lupus - Colinesterasa - Zinc - Estudio citológico o cito químico de líquidos. - Puede realizarse en el otros parámetros bioquímicos.

Para determinaciones en en sangre total o plasma

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MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS

PAGINA 1 DE 00

TUBO TAPA CELESTE

Citrato Na

- Protrombina - TTPK - Fibrinógeno - Fact. de coag. aislados - Antitrombina III - Proteína C y S - Anticoagulante lúpico

La muestra debe tomarse sólo hasta el nivel indicado en el tubo

TUBO TAPA AZUL

Libre de trazas

- Búsqueda de elementos trazas, Arsénico, etc.

El tubo debe solicitarse anticipadamente al Laboratorio.

FRASCO TAPA ROJA

- Utilizado para envío de muestras (líquidas o sólidas) para cultivo corriente, uro cultivo, líquidos estériles, Espermiograma.

FRASCO PARASITOLO

- Muestra parasitológicos seriados.

FRASCO BACILOSCO

- Baciloscopia - Cultivo de Koch

LABPRO

Observar conservación de esterilidad previo a toma de muestra y ma nipulación adecuada. Verificar correcto cierre.

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MANUAL DE TOMA MUESTRAS 12.-

VERSION OO REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00

Instrucciones transporte de muestras.

El centro del quehacer técnico de todos los Laboratorios Clínicos es realizar determinaciones con el menor sesgo analítico y por lo tanto lo más cercano a lo esperado tanto por la clínica en exámenes paciente o a la condición de salud de personas supuestas normales. Aún cuando el proceso analítico se realiza al interior del Laboratorio, la calidad del mismo, en cuanto a la correlación esperada, depende siempre de la calidad de la muestra que entra a proceso. * Todas las muestras serán dispuestas en un contenedor primario (tubo, frasco o tórula con medio de transporte, etc.) *

El contenedor primario se dispondrá de manera vertical, en gradillas (contenedor secundario) que garanticen esta posición durante su envío al Laboratorio, el contenedor secundario quedará envuelto por el material aislante (bolsa plástica).

*

Este contenedor secundario se coloca dentro de un contenedor terciario cerrado, de plástico lavable (tipo Coleman) en el que se envía hacia la sala de recepción del Laboratorio.

*

En el fondo del contenedor terciario deberá colocarse una unidad refrigerante proporcionada por el Laboratorio. Será responsabilidad de los transportitas su recambio para asegurar que siempre haya unidades congeladas disponibles.

*

Idealmente, las muestras para análisis en suero o plasma debieran centrifugarse dentro de los 30 minutos siguientes a su obtención y enviarse centrifugadas para su proceso.

*

Las muestras obtenidas para análisis en sangre total (tubo lila) no deben centrifugarse.

*

La determinación de glucosa en una muestra tomada con más de 30 minutos previos al análisis, siempre debe obtenerse en un tubo tapa gris.

*

En general, las muestras no deben ser expuestas a temperaturas extremas, bajo 4°C o sobre 30°C.

LABPRO

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MANUAL DE

VERSION OO REVISION: 00/00/00

TOMA MUESTRAS

PAGINA 1 DE 00

*

Todas las muestras de orina, para cualquier determinación deben conservarse refrigeradas hasta su envío al Laboratorio

13.

Instrucciones recepción de las muestras.

1.Las muestras serán recepcionadas por orden de llegada, en ese momento el encargado de recibir el envío verificará la integridad de las muestras y que se cumplan los requisitos de acuerdo al instructivo de Aceptación y Rechazo de muestras. 2.-

Cualquier incumplimiento será registrado en el formulario único de registro.

3.-

Las muestras conformes a los requisitos de aceptación serán recepcionadas en el sistema informático del laboratorio.

4.-

Las muestras serán centrifugadas y distribuidas a las secciones respectivas para su procesamiento.

5.-

Se dejará los contenedores listos para volver a su respectiva toma de muestras.

14.El Laboratorio procesa muestras de pacientes atendidos en los diferentes Centros Medicos en convenio con este Laboratorio, como también a todo paciente que llega por indicaciones de terceros. Dandole carácter de urgente a las siguientes prestaciones: * Solicitud del médico tratante. * CKMB * Troponina * Virus respiratorios por inmunocromatografia. Adicionalmente, y debido a condiciones propias de los pacientes, se podrá otorgar el carácter de urgente a: * Terapia anticoagulante oral * Orina completa en caso de sospecha de infección urinaria. * Glicemia en pacientes descompensados. * Sub-unidad Beta HCG.

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MANUAL DE TOMA MUESTRAS

VERSION OO REVISION: 00/00/00 PAGINA 1 DE 00

Estas muestras deberán enviarse al laboratorio como urgencias y sus etiquetas deben venir marcadas con destacador para que el personal de recepción pueda identificarlas rápidamente. Antes de ofrecer las urgencias a los pacientes, debe consultar al laboratorio la disponibilidad de dar carácter urgente a esta prestación.

15.-

Instrucciones solicitud de exámenes adicionales

Laboratorio Providencia mantendrá las muestras ya procesadas , si se requiere realizar una determinación adicional, esta solo se llevará acabo dentro de los dos días siguientes al procesamiento de la muestra, con el fin de que los resultados emitidos sean representativos de la condición propia del paciente. 16.-

Nómina de exámenes subcontratados.

En el Anexo 16 se muestra una tabla con todos los exámenes de que dispone nuestro laboratorio incluyendo el laboratorio de proceso, con la respectiva información de los días y horas de proceso. Se debe tener muy presente esta información para transmitírsela a los pacientes y agregar un día más al tiempo de entrega señalado, debido al tiempo de transporte que se debe agregar, por lo que es frecuente que algunos exámenes no entren a proceso en el mismo día que se obtiene la muestra. Será responsabilidad de los encargados de la toma de muestra manejar la información necesaria, contenida en este manual, para tomar una decisión correcta en cuanto a la toma de muestras. En caso de dudas, deberán consultar directamente con el personal de laboratorio antes de proceder a entregar información.

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17.-

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ANEXO 1 TEST DE HEMORRAGIAS OCULTAS

El estudio de hemorragias ocultas consiste en la detección de sangrado microscópico en el aparato digestivo, por medio del estudio de la existencia de sangre oculta en las heces, como una forma no invasiva de detectar enfermedades del tubo digestivo. Su colaboración siguiendo las instrucciones entregadas es de vital importancia.

INDICACIONES PARA REALIZAR EL EXAMEN Dieta recomendada por 5 días (régimen blanco) 1. Comenzar un régimen blanco 2 días antes de iniciar la toma de muestras del examen, consiste en NO comer alimentos que puedan colorear la deposición. 2. Al tercer día se empieza a realizar el examen (continuando el régimen). 3. Unte con la paleta de helado una pequeña cantidad de excremento, tiñendo dentro de los dos orificios (A y B) cuidando de no derramar fuera de ellos. La tarjeta cuenta con 3 partes, cada una de ellas corresponde a un día de examen. Anote su nombre y fecha de la muestra en el espacio destinado para ello en la tarjeta. 4. Cierre la ventana de la tarjeta que ocupó, al completar los tres días de examen, ponga la tarjeta cerrada en la bolsa plástica entregada, ciérrela y póngala dentro del sobre. Haga llegar el sobre al laboratorio para su análisis.

Alimentos que no puede consumir durante el régimen: Carnes rojas, tomate, betarraga, zanahoria, jaleas de color, salsa de tomate, bebida de colores, fármacos para la anemia (fierro), aspirina y otros, salvo que su médico lo autorice.

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MANUAL DE TOMA MUESTRAS

17.-

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ANEXO 2 INDICACIONES PARA LA RECOLECCION DE ORINA DE 24 HORAS 1. Deberá proveerse de uno más envases bien adecuados (botellas desechables de 2 lts.) bien enjuagados con abundante agua. 2. Dejar secar boca abajo. 3. A las 8.00 horas de la mañana del primer día, vaciar la vejiga, eliminando la totalidad de la orina en el baño. 4. A partir de ese momento, recolecte TODA la orina de cada una de las micciones siguientes, incluyendo la de las 8.00 horas del otro dia (24 horas). 5. Es importante que no elimine ninguna micción del período de recolección pues altera el resultado del examen.

HORARIO DE ENTREGA DE MUESTRAS 8.30 a 10.00 Hrs.

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TOMA MUESTRAS

19.-

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ANEXO 3 EXAMEN PARASITOLOGICO SERIADO 1.-

Las deposiciones pueden ser emitidas a cualquier hora del día y no deben mezclarse con orina.

2.-

Inmediatamente después de obrar, saque una cantidad de deposición del tamaño de una aceituna y deposítelo en el frasco mezclándolo con el líquido hasta formar una pasta homogénea.

3.-

Tape herméticamente el frasco.

4.-

De la misma forma, recoja las dos muestras restantes día por medio, cuidando de mezclar bien el contenido cada vez.

5.-

Mantenga las muestras en un lugar fresco y llévelas al laboratorio una vez que haya recolectado las tres.

NO DEJE LOS FRASCOS AL ALCANZE DE LOS NIÑOS, EL CONTENIDO PUEDE RESULTAR DAÑINO PARA SU SALUD SI ES INGERIDO.

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MANUAL DE TOMA MUESTRAS

20.-

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ANEXO 4 TEST DE GRAHAM

Solicitar en el laboratorio las placas de vidrio necesarias para este examen. En la mañana, antes del aseo y antes de obrar, tomar una de las placas, desprender del vidrio la tira de papel transparente engomado (scotch) y aplicarla varias veces en los contornos del ano; adherir nuevamente esta tira, bien estirada, a la placa de vidrio. Repetir el procedimiento al día siguiente con la segunda cinta de scotch y posteriormente con la tercera, y así hasta completar las 5 ó 3 muestras. Nota: Serán rechazadas y se debe repetir el examen en muestras mal tomadas; contaminadas con cremas, talcos, deposición, cinta muy arrugada, vidrios quebrados. No debe usarse papel engomado letreros sobre la lámina.

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ANEXO 5 INDICACIONES DETERMINACION DE HIDROXIPROLINA

Dieta previa a la recolección de orina de 24 hrs. Para la determinación de Hidroxiprolina en orina de 24 horas, durante los tres (3) días previos y el día de la recolección (4), se debe mantener una dieta libre de: *

Carnes (vacuno, pescado, ave).

*

Mariscos.

*

Dulces.

*

Legumbres.

*

Helados.

INDICACIONES PARA LA RECOLECCION DE ORINA DE 24 HORAS. 1.-

Deberá proveerse de uno o más envases bien adecuados (botellas desechables de 2 lts.) bien enjuagadas con abundante agua.

2.-

Dejar secar boca abajo.

3.-

A las 8:00 de la mañana del primer día, vaciar la vejiga, eliminando toda la oria en el baño.

4.-

A partir de ese momento, recolecte TODA la orina de cada una de la micciones siguientes, incluyendo la de las 8:00 hrs. del otro día (24 horas).

5.-

Es importante que no elimine ninguna micción del período de recolección pues altera el resultado del examen. HORARIO DE ENTREGA DE MUESTRAS 8:30 a 10:00 horas.

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ANEXO 6 INTRUCCIONES PARA EL EXAMEN ESPERMIOGRAMA.-

Es de vital importancia que la muestra sea procesada a la brevedad, por lo que la toma de muestra se efectúa solamente el día sábado de 8:30 a 12:00 horas, en nuestro laboratorio central, ubicado en Av Salesianos 1178 San Miguel. Este requisito es para dar cumplimiento a los requerimientos de calidad sugeridos por la O.M.S. y ud. debe solicitar su hora de atención al 252 260 87. 1.-

La muestra debe ser recolectada con una abstinencia sexual mínima de 3 días y no mayor a 7 días.

2.-

La muestra es obtenida mediante masturbación. El eyaculado se recoge en un frasco limpio y estéril proporcionado por el laboratorio.

3.-

La recolección de la muestra debe ser completa, se debe considerar que la primera porción del eyaculado contiene cerca del 75% del total de espermatozoides, por lo que se hace hincapié en está etapa y la necesidad de recolectar el total de lo eyaculado.

4.-

Una vez obtenida la muestra, diríjase a toma de muestras para que en su presencia se rotule el frascocon la muestra y la hora de emisión de la misma.

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23. ANEXO 7 CATECOLAMINAS URINARIAS Y PLASMATICAS Preparación del paciente.Evitar ingerir alcohol, café, té y ejercicio extremo, a lo menos 24 horas antes de comenzar a recolectar la orina y en el caso de muestras de plasma, 24 horas antes de ir al laboratorio. En el caso de tener terapias medicamentosas prolongadas, solicitamos informarnos en la hoja de solicitud de exámenes; dichos medicamentos. INDICACIONES PARA LA RECOLECCION DE ORINA DE 24 HORAS. * * * * *

Deberá proveerse de uno o más envases bien adecuados (botellas desechables de 2 lts.) bien enjuagados con abundante agua. Dejar secar boca abajo. A las 8:00 horas de la mañana del primer día, vaciar la vejiga, eliminando toda la orina en el baño. A partir de ese momento, recolecte TODA la orina de cada una de las micciones siguientes, incluyendo la de las 8:00 horas del otro día (24 horas). Es importante que no elimine ninguna micción del período de recolección, pues altera el resultado del examen.

HORARIO DE ENTREGA DE MUESTRAS 8:00 a 10:00 horas.

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24 ANEXO 8.CONSENTIMIENTO INFORMADO VIH CONSENTIMIENTO PERA REALIZACION EXAMEN VIH – SIDA Yo, ________________________________________________________________________ RUT:_________________ - ____ Fecha de Nacimiento: _____/___________/____________ Domicilio:___________________________________________________________________ Comuna:___________________________ Ciudad:__________________________________ I-Mail:______________________@_____________ Telefono fijo:_______________________ Telefono móvil:____________________________ AUTORIZO A LABORATORIO CLINICO PROVIDENCIA LTDA, para que me efectúe el examen de detección de anticuerpos contra el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH), solicitado por mi médico tratante. Dr(a):_______________________________________________________________________ ………………………………………………………………………………………………………………………………………… Así también declaro que he sido debidamente informado por parte de mi médico sobre el significado de este examen, y me ha dado la posibilidad de efectuarlas preguntas respectivas para aclarar mis dudas, por lo que estoy en conocimiento de que este examen, está destinado a determinar si soy o no portador del virus del SIDA. Comprendo que si mi examen es reactivo, debe ser enviado al Instituto de Salud Pública para su confirmación, organismo que emitirá el resultado definitivo en el plazo aproximado de un mes. Me comprometo a asistir cuando sea citado por el Laboratorio Clínico Providencia Ltda. para realizar la confirmación de identidad y dar así cumplimiento a la ley vigente.

Por ser el resultado del examen absolutamente confidencial, me comprometo a entregar el nombre, dirección y teléfono de mi médico tratante para que le sea enviado el resultado en caso de necesitar la consejería post-test. Así mismo, comprendo que este resultado debo retirarlo personalmente, no pudiendo delegar esta función en otra persona.

Fecha:_____/_______/______

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Firma paciente:______________________________________

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25 ANEXO 9.INSTRUCCIONES PRUEBAS QUE REQUIEREN CARGA DE GLUCOSA 1.- Realizar determinaciones de glucosa basal desde el tubo con sangre venosa obtenido del paciente utilizando equipo de hemoglucotest. 2.- Si el resultado es mayor a 135 mg/dl, suspender la carga de glucosa y explicar al paciente que no se puede continuar con el examen. 3.- Si se trata de niños o pacientes embarazadas, suspender la carga si el resultado excede los 125 mg/dl 4.- Registrar el valor obtenido en el sistema informático. 5.- Este resultado no debe ser entregado al paciente, ya que se trata de un método de screening rápido, utilizado para evitar ocasionar descompensaciones en pacientes. 6.- Si corresponde, administrar la carga de glucosa y explicar al paciente que no debe realizar ninguna actividad mientras se realiza el examen, ya que esto puede ocacionar variaciones en los resultados. Explicar que debe permanecer en la sala de espera. 7.- La carga habitual es de 75 mg de glucosa, salvo indicación médica, lo que debe estar consignado tanto en la solicitud de examen como en observaciones del sistema informático. 8.- Si el paciente es menor de 12 añoso pesa menos de 45 kilos, se debe administrar 1.75 gr de glucosa por kilo de peso. 9.- Para calcular la cantidad de ml que debe administrar al paciente, realizar el siguiente calculo: Multiplique el peso del paciente por 1.75.Este valor, multiplíquelo por el volumen en cc del frasco de glucosa (generalmente corresponde a 200 ml) y divídalo por 75, que es la concentración de glucosa en el frasco. El resultado corresponde a la cantidad de ml de la solución que debe administrar al paciente. Si necesita ayuda con el calculo, consulte al laboratorio, sección bioquímica. 10.- Registrar en observaciones la hora de cada una de las muestras, partiendo por la basal.

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26 ANEXO 10.INTRUCCIONES TOMA DE MUESTRA ORINA SEGUNDO CHORRO PACIENTES SEXO FEMENINO * * * * * * * *

Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado, sin tocar los bordes. Elimine la primera parte de la micción (primer chorro). Recolecte la orina restante (2° chorro), llenando hasta la mitad del frasco. El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con su pierna o ropa. Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior. Utilice papel absorbente del dispensador para secar el frasco por fuera, en caso de que se haya mojado con orina. Tape cuidadosamente el frasco, y compruebe que quede bien cerrado, entréguelo a la persona que lo atendió. Lave sus manos después de este procedimiento. Si requiere ayuda, solicite asistencia al personal de toma de muestras.

27 ANEXO 11.INSTRUCCIONES TOMA DE MUESTRA ORINA SEGUNDO CHORRO PACIENTE SEXO MASCULINO * * * * * * * *

Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado, sin tocar los bordes. Mantenga el prepucio retraído durante todo el procedimiento. Comience a orinar y elimine el primer chorro (+/- 10 ml) Recolecte la orina restante (2° chorro), llenando hasta la mitad del frasco. El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con su pierna o su ropa. Utilice papel absorbente del dispensador para secar el frasco por fuera, en caso de que se haya mojado con orina. Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior. Tape cuidadosamente el frasco, y compruebe que quede bien cerrado. Lave sus manos después de este procedimiento.

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