Bioanalytik I – RNA/DNA Biochemie
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UV Absorption
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1
PCR I
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PCR II
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2
RT/PCR
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Nekrose/Apoptose
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3
Apoptose II
Fig. 12. Nuclei of apoptotic C6-cells (stained with Hoechst No. 33258). They appear shrunken and shriveled and are more luminous than non-apoptotic ones. Magnification: 400 fold
Fig. 13. Nuclei of C6-cells that show no sign of apoptosis (stained with Hoechst No. 33258). Magnification: 400 fold
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Trennung eines Testgemisches auf einer selbstbelegten Kapillare 11
10
Kapillare: 57 cm (L), 50 cm (l), 75 µm I. D., selbst belegt. Bedingungen: 10 kV, 30° C, 8 µA Puffer: 44 % TRIS, 56 % Borat + 7 M Harnstoff über 450.000 theoretische Böden
9
7
6
40 Nukleotide
20 Nukleotide
mAU
8
5
4
3
2 35
40
time(min)
45
50
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4
Anwendungen für Oligomerentrennungen 10
59
9
Primer (OL 210)
33 Nukleotide
8
49
7
33 Nukleotide
29
19
6
mAU
mAU
39
5
4
3
9 2
-1 30
40
time(min)
1
50
0 35
time(min)
40
33-Basen Oligomer nicht HPLC gereinigt
45
nach HPLC Reinigung
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CGE-Trennung 29,5 23130
60.00
R2 = 0.9053
24,5
50.00
Zeit [min]
40.00
19,5
30.00
RFU
20.00
9416
14,5
10.00
6557
0.00 0
5000
10000
15000
20000
25000
Basenpaare [bp]
9,5 4361 2322 564
125
2027
4,5
-0,5 0
10
20
30
40
50
60
Zeit [min]
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5
Kontrollversuch 39.5
34.5
29.5
RFU
24.5
19.5
14.5
9.5
4.5
-0.5 0
10
20
30
40
50
60
70
80
Zeit [min]
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Apoptose 29.5
24.5
19.5
RFU
900 14.5
720 9.5
180
360
540
4.5
-0.5 0
10
20
30
40
50
60
70
80
Zeit [min]
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6
Gelelektrophorese (1)
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Gelelektrophorese (2)
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7
Gelelektrophorese (3)
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Blot-Techniken Übertragung 2D-Gel ⇒ Membran, die Nachweis- und Quantifizierungsreaktionen zuläßt Southern Blot (nach E.M.Southern): DNA Northern Blot: RNA Western Blot: Proteine
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8
Zielsetzung des Blottens PAGE
Blot-Membran
Identifizierung
Quantifizierung (?)
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Tank-Blotting 1980: Bittner et al. Gel und Membran werden zwischen Filterpapiere + Schwämme gelegt Elektrophoretische Übertragung bei kleiner Spannung Effiziente Kühlung nötig!
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9
Semidry-Blotting 1984: Kyse-Andersen Horizontales „Blot-Sandwich“ Durch die elektrochemische Ra. an den Elektroden (Wasser) stellt sich ein pHGradient ein (Kathode: pH 12; Anode: pH 2) Beschwerung nötig, da die entstehenden Gase den Stapel auseinanderdrücken Keine Kühlung nötig!
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Blot-Membranen - Materialien früher: Nitrocellulose (löst sich in org.LM) Polyvinylidenfluorid (PVDF) Polypropylen (PP) Siliconisierte Glasfasern (SGF)
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10
Blot-Membranen - Eigenschaften Hydrophobizität: bestimmt Proteinbindung Porengröße Spezifische Oberfläche (zugängliche Oberfläche) Hohes Proteinbindungsvermögen bei geringem Porenvolumen und hoher spezifischer Oberfläche
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Antisense Oligonukleotide DNA Transkription
Hemmung der Transkription durch Tripelhelixbildung
Primäres RNA-Transcript Processing
Inhibierung des processing (5'-Capping, Splicing, Polyadenylierung)
mRNA Nucleus
Transport
Transporthemmung durch Doppelstrangbildung
Cytoplasma
mRNA Translation
Enzymatischer Abbau von Doppelsträngen (RNAse H) Hemmung der Translation durch Doppelstränge
Protein
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Spezifische Wirkungen abhängig von Sequenz: Hemmung der Genexpression des Zielproteins Ausschluss der Hemmung eines anderen Gens (BLAST Datenbank) ca. 4 Mrd. Basenpaare im menschlichen Genom 18mer kommt statistisch 1x in 68 Mrd. Basenpaaren vor nicht berücksichtigt: keine Zufallsverteilung der Basensequenz im Genom Paarung auch bei bis zu drei „mismatches“ möglich
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Unspezifische Wirkungen bedingt durch polyanionisches Backbone: Hämostase Aktivierung des Komplementsystems erst deutlich über therapeutischem Bereich bedingt durch spezielle Strukturen: Immunstimulation durch CpG Motiv und Phosphorthioat-Backbone
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12
Wahl der Antisense-Sequenz Ausschluss
der Hybridisierung an andere mRNA (Gendatenbank)
max.
2 CpG Motive, keine Hairpinstrukturen, nicht mehrere aufeinander folgende Guanosine
Wahl eines geeigneten Abschnitts der Ziel-mRNA: Zugang ev. durch Sekundär- und Tertiärstruktur gehindert bei Angriff an codierende Region meist keine Wirkung Vorhersage der mRNA-Sekundärstuktur noch unzuverlässig empirische
Testung („gene walk“) von vielen Oligonukleotiden nötig
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Modifikationen Verbesserung der Stabilität, Hybridisierungsaffinität und Pharmakokinetik: HO
Base O
chemische Modifikationen Phosphorthioat-Backbone 2‘-O-Alkyl- bzw. Oxyethylenketten
HO
O
Base
HO O
zwitterionische Oligonukleotide u.v.a.
HO O H
H
O
H
HO
O
O
Base O
H
O P SBase
O H
O
Base
O H
O
H
H
O
H
HO
O
NH2
H
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13
ASO in klinischer Prüfung (Auswahl) Antisense-Oligonukleotid Fomivirsen (Vitravene®) Oblimersen (Augmerosen, Genasense®, G3139) Alicaforsen (ISIS 2302) ISIS 3521 ISIS 5132 ISIS 2503 ISIS 104838 ISIS 14803 GEM 231 MG 98 Resten-NG GTI-2040 LE-AON
Zielprotein CMVIE2 BCL-2
Indikation Status (klinische Phase) Retinits durch CMV zugelassen Melanom, II/III Lymphom u.a. ICAM-1 Morbus Crohn III Lungenkarzinom II Protein Kinase C α RAF Kinase solide Tumore II HRAS Krebs II TNF-α Rheumatoide II Arthritis Polyprotein Initiationscodon Hepatitis C II Protein Kinase A1 solide Tumore II DNA Methyltransferase solide Tumore II c-MYC Restenosis II R2-Ribonukleotidreduktase Krebs II c-RAF Krebs I/II
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Schmelztemperatur Maß für Hybridisierungsaffinität Temperatur, bei der 50% der DNA als Duplex vorliegt Bestimmung durch UV-Absorption oder CD-Änderung
Rel. Absorption
1,2 1,0 0,8 0,6 0,4 0,2 0,0 80
70
60
50
-0,2 Temperatur
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14
Salzlösung
Oblimersen
Konjugat mit 3 Lysin
Fluorescein-Konjugat
reverse ASO
scrambled ASO
Oblimersen
3 Lys
2 Lys
1 Lys
Fluorescein
ohne Ligand
80 70 60 50 40 30 20 10 0 umgedreht
BCL-2 (%)
Western Blot
BCL-2
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Genetischer Fingerabdruck
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15
Sequenzierung
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Sequenzierung
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16
Sequenzierung II
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Transformation
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17
Selektionierung
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Definition
Als rekombinante Wirkstoffe werden solche Arzneistoffe bezeichnet, die von speziell zu diesem Zweck gentechnisch modifizierten Organismen produziert werden. (siehe auch Def.: DNA-rekombinationstechnisch hergestellte Produkte im EuAB)
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18
Historische Entwicklung I am Beispiel des Insulins:
Entdeckung des Zusammenhanges zwischen Pankreas und Diabetes [Minkowski et al.]. 1889
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Historische Entwicklung I am Beispiel des Insulins:
Isolierung des Insulins aus tierischen Bauchspeicheldrüse [Banting und Best]. 1889 1921
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19
Historische Entwicklung I am Beispiel des Insulins:
Erste Behandlung des Diabetes mellitus. 1889 1921 1922
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Historische Entwicklung I am Beispiel des Insulins: Erste technische Produktion des Insulins aus Rinder- und Schweinepankreasgewebe (Eli Lilly / Hoechst). 1889 1921 1922 1923
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20
Schwachpunkte von tierischem Material
Standardisierung
Reinheit
Allergenität
Verfügbarkeit
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Historische Entwicklung II am Beispiel des Insulins:
Bestimmung der Aminosäuresequenz [Sanger et al.]. 1955
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21
Historische Entwicklung II am Beispiel des Insulins:
Vollsynthese des Insulins [Zahn et al. und chinesische Arbeitsgruppen]. 1955 1963
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Historische Entwicklung II am Beispiel des Insulins: Röntgenstruktur des Insulins [CrowfootHodgkin].
1955 19631967
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22
Historische Entwicklung II am Beispiel des Insulins: Aufklärung der DNA-Sequenz, erste Expression von Insulin cDNA in Bakterien [Goeddel et al.] 1955 1963 1967 1977/78
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Historische Entwicklung II am Beispiel des Insulins: Markteinführung des ersten gentechnisch hergestellten Insulins [Eli Lilly]. 1955 1963 1967 1977/78 1982
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Molkularbiologische “Werkzeuge” - geschichtliche Meilensteine 1953 1956 1959 1960 1961-68 1968 1970 1970 ff 1973 1981 1982 1985 1985 1988 1997 2000
DNA Doppelhelix Isolierung der DNA Polymerase Plasmide, bakterielle Vektoren zur Übertragung von Antibiotika-Resistenzen mRNA Entschlüsselung des genetischen Codes Restriktionsendonucleasen Reverse Transcriptase Sequenzierung von DNA Abschnitten Rekombination von Genen DNA Syntheseautomaten Transgene Maus mit zus. Wachstumshormon-Gen PCR Zulassung des zweiten rekombinanten Arzneistoffes rh-GH (Somatropin) Start des Human Genom Projektes Dolly Human Genom vollständig sequenziert
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Proteinbiosynthese Ribosom
m-RNA
T A C G Protein
AS DNA Insulin
Posttranslational e Modifikationen
Interferone Erythropoietin FSH / HCG Universität Wien Department für Medizinisch/Pharmazeutische Chemie
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Vom Protein zum Genabschnitt Aminosäuresequenz (ein-Buchstaben Code, 166AS) APPRLICDSR VLERYLLEAK EAENITTGCA EHCSLNENIT VPDTKVNFYA WKRMEVGQQA VEVWQGLALL SEAVLRGQAL LVNSSQPWEP LQLHVDKAVS GLRSLTTLLR ALRAQKEAIS PPDAASAAPL RTITADTFRK LFRVYSNFLR GKLKLYTGEA CRTGDR
Mögliche DNA C C C C C C C C C C GCU - CCU - CCU - CGU - CUU - AUU -UGU - GAU - AGU - CGU................... A A A A A A A G G G G G G
Synthese kurzer DNA Abschnitte die als Primer zur Durchmusterung von cDNA Datenbanken dienen
Selection des tatsächlichen humanen Genabschnitts Amplifikation mittels PCR, anschließend Sequenzierung GCA - CCU - CCG - CGU - CUA - AUC -UGU - GAU - AGC - CGU...................
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Rekombination des Genabschnittes mit der DNA des Expressionssystems Polyadenylierungssign al
Promotor
Origin
Selektionsmark er
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Plasmide
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Expressions Systeme • E. Coli • CHO (Chinese Hamster Ovarian) • BHK (Baby Hamster Kidney) • Hefe (Saccharomyces cerevisiae) • Pflanzen, Insektenzellen, Transgene Tiere Universität Wien Department für Medizinisch/Pharmazeutische Chemie
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