ACTUALIZACION TOMA DE MUESTRAS VIROLOGICAS Abril 2014
MV. Judith Mora R. Jefe Subdepto. Enfermedades Virales ISP
METODOS DE DIAGNOSTICO VIRAL A. DETECCION DE VIRUS •Aislamiento viral en cultivos celulares. •Inoculación en animales de laboratorio •Inoculación en huevos embrionados B. DETECCIÓN INDIRECTA O PRODUCTOS VIRALES. •Inmunofluorescencia (IFD). •Inmunoensayo enzimático (ELISA) C. DETERMINACION DE ANTICUERPOS Métodos serológicos (sueros pareados o muestra única) •ELISA (IgM –IgG) •Inmunofluorescencia (IFI). D. DETECCION DE MATERIAL GENETICO VIRAL • Reacción de polimerasa en cadena (PCR)
CONSIDERACIONES PARA TOMA Y ENVIO DE MUESTRAS PARA ESTUDIO VIROLOGICO • PERIODO OPTIMO DE RECOLECCION – Ej: Aislamiento viral en fase aguda • TIPO DE MUESTRA – Ej: Sangre c/EDTA • SITIO DE OBTENCION
– Ej: Deposición • TECNICA DE OBTENCIÓN DE LA MUESTRA – ANF vs Tórula faríngea • RECOLECCION DE LAS MUESTRAS – Envase estéril, cierre hermético, etc • TRANSPORTE DE LAS MUESTRAS – Temperatura, medio transporte, etc
1º
Tº
2º: protege el embalaje/envase secundario de los daños físicos durante el transporte.
3º
identificar al remitente y al destinatario.
Incluir formularios de datos relativos a la muestra
Organigrama Subdepartamento Enfermedades Virales
Laboratorio Nacional de Referencia y cumple acciones de vigilancia establecidas en el Reglamento sobre Notificación de Enf. Transmisibles de Declaración Obligatoria .
R.R.H.H: Profesionales
26
Técnicos, Auxiliares, Administrativos
24
Total
50
32.000 muestras Exámenes por Algoritmos Diagnósticos
Virus Entéricos • Vigilancia PFA Apoyo a erradicación del virus Polio Último caso en América 1991 (Perú)
• Meningitis Viral Estudio brotes
Diarreas agudas con diferentes etiologías:
• Vigilancia Rotavirus Hospitales centinelas (V, VIII, RM) MINSAL-OPS • Vigilancia Gastroenteritis virales (Norovirus, ADV, Astrovirus, Rotavirus): – Centinelas ambulatorios – Estudio Brotes
Nombre exámen / Prestación
Método
Tipo de muestra
Requisitos previos
Volumen de muestra
Transporte y conservación
Plazo de respuesta en días hábiles
Deposición: envase estéril, tapa rosca. sin medio de transporte Aislamiento Aislamiento LCR: envase estéril, 0-5 días de de en cultivos tapa rosca. evolución Enterovirus celulares Liq.pericárdico: envase estéril tapa rosca
Deposición: Congelar (-18º 1 cuch. de té a -20ºC) o LCR o Líq refrigerar (2º a Pericard: 1 8ºC) con envio ml ped inmediato 2 ml adulto
15
Vigilancia Aislamiento Poliovirus en cultivos (sospechos celulares os PFA)
Congelar (-18º 10 grs. (1 a -20ºC) y cuch. de té) enviar en frío 2º a 8ºC. .
15
Deposición sin medio de transporte en 0-14 días de envase estéril tapa evolución rosca
Vigilancia de Virus * Deposición sin * 0-3 días de Gastroenteri medio de transporte en evolución en cos: Inmunoquím envase esteril tapa niños menores 5 10 grs. (1 Adenovirus ica y RT-PCR rosca . años : cuch. de té) entéricos, **5 a 10 muestras por Centinelas Astrovirus, Brotetificado) ambulatorios Norovirus y otros Técnicas Vigilancia Serológicas Deposición sin medio Rotavirus Inmunoenzi de transporte, envase (Centros máticas esteril tapa rosca Centinelas) ytipificación
0-5 días de evolución en niños, hasta 5 años de edad, hospitalizados
Congelar (-18º a -20ºC) y enviar en frío 2º a 8ºC. .
21
Congelar (-18º 10 grms. (1 a -20ºC) y cuch. de té) enviar en frío 2º a 8ºC. .
21
Virus Respiratorios • Vigilancia Virus Respiratorios : ADV, VRS, PI , Metapneumovirus) e Influenza A y B – IRAG complicación frecuente de la Influenza – Red Lab. Hosp. Centinelas IFI – Red Lab. Regionales PCR – Centro Nacional Influenza para OMS Aislamientos Recepción hasta 12:00 hrs por tipo procesamiento
Nombre exámen / Prestación Método
Aislamiento Aislamiento de Influenza en cultivos AyB celulares
Aislamiento Virus Respiratorio Sincicial , Adenovirus, Parainfluenza
Inmunofluorescencia Indirecta para Virus Influenza A, B
Aislamiento en cultivos celulares
Tipo de muestra
a) Gargarismo b) Aspirado ANF Máximo 3 días de c) Tórula con evolución secreción NF d) Biopsia tejidos
a) ANF b) Tórula secreción NF c) Biopsia tejidos Hasta 5 días de d )ADV: Tórula evolución secreción conjuntival
Inmunofluore Frotis fijado scencia Aspirado NF
PCR para Influenza A, B PCR
Requisitos previos
Aspirado nasofaríngeo o tórula secreción nasofaríngea o biopsia pulmón
Hasta 3 días de evolución Otros VR :Hasta 5 días de evolución
Hasta 3 días desde inicio de los síntomas
Volumen de Transporte y muestra conservación
Medio transporte viral Hanks´s 0,5% gelatina +antibiótico en frío c/refrigerante s T° 2 – 8 C Medio transporte viral Hanks´s 0,5% gelatina +antibiótico en frío c/refrigerante s T° 2 – 8 C
Plazo de respuesta en días hábiles
15
15
En frío con refrigerantes. T° 2-8°C
3
Medio transporte viral Hanks´s 0,5% gelatina c/antibiótico c/refrigerante s T° 2 - 8 C
5
Virus Exantemáticos • Vigilancia Integrada Sarampión-Rubéola: • Pacientes con exantema macular que puede ser acompañado de fiebre, conjuntivitis, artralgia, linfoadenopatías , etc • SRC malformaciones congénitas (1er trimestre embarazo) Recomendaciones: – Muestra para aislamiento ideal Aspirado – En su defecto, orina: mínimo 50 ml, enviar siempre junto a la muestra de suero. • Otras: CMV, Herpes
Nombre exámen / Prestación
Método
Requisitos Tipo de muestra previos
Volumen Volumen de de muestra muestra adulto pediátrica
Suero extraído 1 ml en forma estéril Enviar ELISA, IF, 2 ml suero. suero. enviar en tubo muestras con aislamiento, ANF en ANF en estéril tapa formulario de Vigilancia Sarampión RT-PCR medio de medio de rosca. En casos vigilancia con la Rubeola (según transport transporte seleccionados totalidad de los e viral o viral o 50 algoritmo ANF antecedentes ISP) 50 ml ml orina (Orina a solicitados orina solicitud)
Estudio Inmunidad Sarampión
Vigilancia Síndrome Rubeola Congénita .
Suero extraído Inmunofluor en forma estéril escencia enviar en tubo No tiene (IF) (IgG) estéril tapa rosca ELISA IgM (algoritmo ISP)
Serología IgG RubéolaELISA IgG
Suero en tubo estéril tapa rosca . Suero, en tubo estéril tapa rosca .
1 ml
2 ml
Recién nacidos 1 ml de < 1 año suero
1 ml de suero
3 ml suero
Transporte y conservación
Plazo de respue sta en días hábile s
Aspirado con medio de transporte viral Hanks´s con 0,5% gelatina mas antibiótico. Enviar con unidades refrigerantes Tº 2-8ºC.
4
En frío Tº 2-8ºC. Con unidades refrigerantes
5
En frío Tº 2-8ºC. Enviar con unidades refrigerantes En frío Tº 2-8ºC. Enviar con unidades refrigerantes
10
10
Nombre exámen / Prestación
Requisitos previos
Método
Tipo de muestra
ELISA
Suero en tubo estéril tapa rosca .
Estudio transplante
Serología IgM Citomegalovirus
ELISA
suero, en tubo estéril tapa rosca.
IgM recién nacidos < 3 meses con Síndrome de TORCH
Aislamiento de Citomegalovirus
Orina,Recolecciò Aislamiento n: segundo 24 horas de en cultivos chorro. Envase evolución celulares estéril, tapa hermética
Aislamiento Herpes Simplex
a) LCR en tubo estéril tapa rosca o de goma b) Contenido Aislamiento vesicular en cultivos De 0- 2 días (Líquido de celulares lesión) c) Tórula Secreción Vaginal
Serología IgG CITOMEGALOVIRUS
Aislamiento Aislamiento de Virus Tórula de lesión en cultivos Hasta 3 días Varicela Zoster vesicular celulares
Volumen de Volumen de Transporte y muestra muestra conservación pediátric adulto a
Plazo de respu esta en días hábile s
En frío Tº 2-8ºC. Enviar con unidades refrigerantes
10
1 ml de suero
En frío Tº 2-8ºC. Enviar con unidades refrigerantes
10
3 ml
3 ml
Refrigerar sin medio de transporte viral
21
LCR: 1 ml
Con medio de transporte viral Hanks´s con 0,5% gelatina mas antibiótico. Enviar con refrigerantes T° 2–8C
7
En frío Tº 2-8ºC. Enviar con unidades refrigerantes
15
1 ml de suero
LCR: 1 ml
3 ml suero
SIDA • Enfermedad causada por VIH: Confirmación de muestras reactivas al tamizaje en el país
Verificar clave en CI • Diagnostico SIDA pediátrico (< 2 años) Recepción lu a Ju por tipo procesamiento
• Estudios Genotipificación, FRVIH http://formularios.ispch.cl
NOMBRE DE LA PRESTACIÓN
ENSAYOS
TIPO DE MUESTRA
REQUISITOS PREVIOS
CRITERIO DE VOLUMEN ACEPTACION, MUESTRA ALMACENAMIENTOTRANSPORTE
PLAZO DE RESPUESTA (DIAS HABILES)
Suero o plasma: En frío Tº 2 - 8ºC. Enviar Determinación * Suero o plasma con unidades de Ag HIV (Técnicas Técnicas Muestra refrigerantes. Ac IgG anti HIV serológicas) serológic doblemente 12 días, VIH ADULTO as: 1 ml * Sangre con reactiva al Sangre con 90,6% año CONFIRMACION Ácidos Técnicas anticoagulante tamizaje de VIH anticoagulante: 2013) nucleicos: EDTA (téc. molecula Temperatura ambiente provirus y res: 4 ml moleculares) (15-25 ºC) no más de RNA de HIV 48 hrs desde la extracción.
Detección de AntígenoSangre con VIH PEDIATRICO anticuerpo virus anticoagulante CONFIRMACION VIH, Ag P24, EDTA virus VIH (PCR , RNA)
En > 2 años a solicitud. En a 8 días de suero y 1 ºC con y 2 ml de evolución. ml de unidades LCR LCR refrigerantes
10
10
Virus Oncogénicos, otros • Vigilancia HTLV I/II (Virus linfotrópico de células T humano) Confirmar muestras reactivas tamizaje país y casos sospecha de Leucemia Linfotrópica y Paraparesia Espástica http://formularios.ispch.cl/Externo/Form ularioExterno.aspx • Diagnóstico y estudios Virus Papiloma Humano : El VPH puede causar verrugas genitales y ciertos cánceres (CaCu). • Estudio brotes Parotiditis : infección aguda con aumento volumen glándula parótida.
gp46 HTLV-I
9 5 CELLULAR RECEPTOR
k d
Tax (p40), Rex (p27,p21)
HTLV-I p14
Nombre exámen / Prestación
Método
Tipo de muestra
Requisitos previos
Confirmación HTLV I/II
Muestra Doblemente reactiva y casos de ELISA , IF, Sangre con PCR (según anticoagulante sospecha de algoritmo) (EDTA o citrato) Leucemia Linfotrópica y Paraparesia Espástica
Volumen de Volumen Transporte y muestra de muestra conservación pediátric adulto a
3ml
5 ml
En frío Tº 2-8ºC. Enviar con unidades refrigerantes. No más de 4 ds. desde extracción a la recepción en laboratorio
Estudio de Brotes de Serología, Parotiditis PCR
En frío de 2 a 8 ºC con unidades 1 ml Suero o plasma Sólo estudio de 3 ml suero refrigerantes. No suero y 3 y Orina en tubo brote según y 3 ml de más de 4 ds. ml de estéril circular MINSAL orina desde extracción orina a la recepción en laboratorio
Virus Papiloma Humano (VPH)
Tórula de lesión o raspado de zona sospechosa de infección genital / Biopsias de tejidos / condiloma ; tubo estéril tapa rosca con medio de transporte.
PCR
En frío de 2 a 8 ºC con unidades refrigerantes. No más de 4 ds. desde extracción a la recepción en laboratorio
Plazo de respu esta en días hábil es
15
7
10
RABIA • Sd neurológico agudo (encefalitis ) que progresa a coma , insuficiencia respiratoria y muerte. Pacientes con antecedentes contacto con animal sospechoso.
•Estudio de inmunidad en mascotas . •Vigilancia virus Rábico: Animales sospechosos: murciélagos, perros, gatos (*) Recepción 24 horas •Caracterización antigénica para determinar variantes virales circulantes Recomendaciones: Cumplir normas de transporte, bioseguridad • Diagnóstico de Rabia en humanos
NOMBRE DE LA TIPO DE MUESTRA PRESTACIÓN
REQUISITOS PREVIOS
Sangre s/anticoagulante, o suero en un tubo INMUNIDA plástico estéril con D PARA tapa rosca o tapón RABIA de goma. ESTUDIO En caso de sospecha de rabia humana (*)
Animal VIRUS RABICO En caso de VIGILANCI sospecha de rabia A humana (*)
VOLUMEN MUESTRA ADULTO PEDIATRICO
30 días después de 2 ml de la sangre o 1 vacunación ml suero antirrábica.
Sospecha No Aplica de rabia.
* Ver siguiente tabla
PLAZO DE DESCRIPCION DE ALMACENAMIENTOTRAN RESPUESTA PRESTACION SPORTE (DIAS HABILES)